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Fidรฉlitรฉ de lโinitiation de la transcription
La faible spรฉcificitรฉ de sรฉlection du TSS par le PIC conduit ร la production dโisoformes des transcrits et peut avoir un rรดle rรฉgulateur pour lโexpression des gรจnes (Arribere & Gilbert, 2013; Malabat et al, 2015). En effet, le choix dโun site alternatif de dรฉmarrage de transcription peut avoir plusieurs consรฉquences :
– Le transcrit peut avoir conservรฉ le site de dรฉmarrage de la traduction (codon AUG) mais avec une extrรฉmitรฉ 5โ non traduite diffรฉrente (5โ UTR). Dans ce cas lโefficacitรฉ de traduction et donc le niveau dโexpression du gรจne sera impactรฉ (Arribere & Gilbert, 2013).
– Le TSS alternatif peut avoir gรฉnรฉrรฉ un autre codon AUG, dans la mรชme phase de traduction mais en aval du premier, qui conduirait ร la production dโune protรฉine tronquรฉe (Arribere & Gilbert, 2013).
– Le TSS sรฉlectionnรฉ peut รชtre en amont de la phase ouverte de lecture du gรจne et crรฉer un petite phase ouverte de lecture dite uORF qui fera du transcrit gรฉnรฉrรฉ une cible pour la dรฉgradation liรฉe au contrรดle qualitรฉ des ARNm (Malabat et al, 2015).
– Enfin, les TSS alternatifs peuvent รชtre situรฉs en amont ou en aval de sites de terminaison prรฉcoce (de type ยซ NNS ยป, voir plus loin) et ainsi conduire, selon les conditions de croissance, ร une transcription abortive ou normale (Voir Partie I.3).
Architecture de la chromatine au niveau des promoteurs
Lโinformation gรฉnรฉtique de la cellule est codรฉe dans le noyau, au niveau de lโADN qui est lui-mรชme empaquetรฉ dans la chromatine au sein des chromosomes (Figure 5).
Ainsi, le premier niveau de compaction de lโADN est son enroulement autour des octamรจres dโhistones, pour former les structures appelรฉes nuclรฉosomes. Chez S. cerevisiae, les histones sont au nombre de 5 : H1, H2A, H2B, H3 et H4. Lโhistone H1 a un rรดle trรจs limitรฉ dans lโinitiation de la transcription (il intervient plutรดt dans la rรฉgulation de la compaction de la chromatine au cours de la sporulation), mais les quatre autres sont prรฉsents en deux copies au sein de la structure du nuclรฉosome (Rando & Winston, 2012). Les protรฉines dโhistones (de 11 ร 23 kDa) ont la particularitรฉ dโavoir un domaine de repliement nommรฉ ยซ histone fold ยป ร lโextrรฉmitรฉ C-terminale, indispensable ร lโinteraction entre histones pour former la structure du nuclรฉosome. Ces protรฉines ont รฉgalement une queue N-terminale, exposรฉe ร lโextรฉrieur du nuclรฉosome et qui sont la cible de nombreuses modifications post-traductionnelles (Rando & Winston, 2012) (Voir paragraphe 3).
Pour initier la transcription, lโARN polymรฉrase II et les facteurs gรฉnรฉraux de transcription doivent accรฉder ร lโADN empaquetรฉ dans la chromatine. Les nuclรฉosomes constituent donc une premiรจre barriรจre physique ร lโassemblage de la machinerie de transcription au niveau du promoteur. Les modifications de la chromatine ont alors un fort impact sur la transcription des gรจnes et les promoteurs gรฉniques prรฉsentent une architecture bien particuliรจre de leur chromatine (Hahn & Young, 2011; Rando & Winston, 2012).
Les promoteurs gรฉniques ont une organisation de la chromatine bien spรฉcifique, qui diffรจre selon leur niveau et frรฉquence dโexpression. Tous les promoteurs gรฉniques se caractรฉrisent par une rรฉgion pauvre en nuclรฉosome, appelรฉe NFR pour ยซ Nucleosome Free Region ยป, qui est nรฉcessaire ร lโassemblage du PIC. Cette NFR est entourรฉe de deux nuclรฉosomes spรฉcifiques, le nuclรฉosome situรฉ juste en amont (-1) รฉtant la cible des rรฉgulations transcriptionnelles, et le nuclรฉosome situรฉ au niveau du TSS (+1) qui doit รชtre dรฉcalรฉ pour lโinitiation transcriptionnelle (Rando & Winston, 2012; Cairns, 2009; Venters & Pugh, 2008).
Rรฉgulations transcriptionnelles ร lโรฉtape dโinitiation
On oppose la transcription basale, de faible niveau et nรฉcessitant la machinerie dโinitiation minimale, ร la transcription activรฉe faisant intervenir des rรฉgulateurs transcriptionnels divers. La rรฉgulation de la transcription a majoritairement lieu au niveau de lโinitiation de la transcription, et est rรฉalisรฉe de diffรฉrentes faรงons :
โข Par le recrutement de co-activateurs transcriptionnels et de GTF au niveau des promoteurs : il a รฉtรฉ observรฉ que lโactivation de lโexpression des gรจnes est corrรฉlรฉe ร une augmentation du niveau de GTF et de facteurs de transcription sur les rรฉgions promotrices ainsi que sur les sรฉquences rรฉgulatrices UAS pour ยซ Upstream Activating Sequences ยป (sites ciblรฉs par les facteurs de transcription, en amont du PIC) (Hahn & Young, 2011).
โข Par des changements conformationnels de la machinerie de transcription pour augmenter son activitรฉ : ce type de rรฉgulation sโeffectue par lโintermรฉdiaire du complexe Mรฉdiateur. Ce complexe de 25 sous-unitรฉs protรฉiques joue un rรดle dโintermรฉdiaire entre les rรฉgulateurs transcriptionnels et les GTF. Il permet effectivement une intรฉgration de divers signaux de facteurs de transcription, qui se traduit par un changement conformationnel et a des consรฉquences directes sur la formation du complexe de prรฉ-initiation (stimulation du recrutement de lโARN pol II, stabilisation du PICโฆ) (Hahn & Young, 2011).
โข La modification de la structure de la chromatine : la modification de la chromatine peut avoir lieu par des modifications chimiques au niveau des queues dโhistones composant le nuclรฉosome. Ces modifications chimiques peuvent รชtre des mรฉthylations, acรฉtylations, phosphorylations et ubiquitinylations des queues dโhistones. Elles sont apposรฉes ou retirรฉes par des enzymes spรฉcifiques, qui peuvent รชtre recrutรฉes par des facteurs de transcription (Hahn & Young, 2011; Rando & Winston, 2012; Millar & Grunstein, 2006).
Lโacรฉtylation a globalement un impact positif pour la transcription, puisquโelle neutralise les charges sur les queues dโhistones et diminue ainsi leur interaction avec lโADN au sein des nuclรฉosomes. Cependant, lโensemble des marques de modification de la chromatine constitue un code histone complexe, qui peut avoir un effet nรฉgatif ou positif pour lโexpression gรฉnique (Rando & Winston, 2012).
A cรดtรฉ des modifications dโhistone, des remodelages de la chromatine sont aussi rรฉgulateurs pour lโinitiation de la transcription. Ils sont permis par des complexes de remodelage dont lโactivitรฉ dรฉpend de la prรฉsence dโATP et qui peuvent soit expulser des histones, soit les faire glisser dโune position ร une autre.
Mรฉcanisme dโรฉlongation transcriptionnelle
Pour la transition entre lโinitiation de la transcription et son รฉlongation, le complexe de transcription doit quitter la rรฉgion promotrice. Ce phรฉnomรจne sโappelle le dรฉgagement du promoteur (ยซ promoter clearance ยป). Dans les premiers temps de lโรฉlongation, la bulle de transcription formรฉe en fin dโinitiation reste ร sa position initiale et sโรฉtend en taille au fur et ร mesure de lโextension de lโARN transcrit. Lorsque le transcrit a atteint la taille de 17 bases environ, lโextrรฉmitรฉ 5โ de lโARN se dรฉs-hybride de lโADN matrice et pourra ensuite entrer dans le tunnel de sortie de la polymรฉrase II. Lโhybride ARN-ADN aura finalement une longueur dโenviron 8 nuclรฉotides (Hahn, 2004; Luse, 2013).
Pour le dรฉgagement du promoteur, lโARN pol II doit par ailleurs perdre ses interactions avec les facteurs dโinitiation de la transcription et lโADN du promoteur. Cette transition est favorisรฉe par la marque S5P du CTD. Cette phosphorylation va รฉgalement permettre de recruter les facteurs nรฉcessaires ร lโajout de la coiffe (guanosine modifiรฉe et mรฉthylรฉe ajoutรฉe en 5โ) sur lโARN naissant, afin dโaugmenter sa stabilitรฉ et permettre le recrutement dโautres facteurs. Aprรจs la synthรจse dโenviron 30 bases dโARN, lโARN pol II quitte le PIC et le promoteur. Les GTF et co-activateurs transcriptionnels restent pour la plupart associรฉs ร la rรฉgion promotrice constituant un รฉchafaudage qui permet une rรฉ-initiation rapide de la transcription. Seuls les facteurs TFIIB et TFIIH devront รชtre recrutรฉs ร nouveau avec lโARN pol II (Hahn, 2004; Luse, 2013).
Au dรฉbut de la phase dโรฉlongation, la polymรฉrase II fait une pause et sโaccumule en aval du TSS. Cette pause joue un rรดle clรฉ car elle permet dโeffectuer un contrรดle-qualitรฉ du transcrit (notamment de lโajout de sa coiffe) avant de passer ร lโรฉlongation productive (Jonkers & Lis, 2015).
Il a รฉtรฉ montrรฉ que mรชme si la polymรฉrase II est trรจs processive in vitro sur de lโADN nu, elle nโest pas trรจs efficace pour transcrire une matrice ADN empaquetรฉe dans la chromatine. Plusieurs facteurs dโรฉlongation (EF) vont donc รชtre recrutรฉs au niveau du complexe de transcription pour faciliter le processus dynamique de lโรฉlongation et en rรฉguler sa vitesse.
Etant modulaires, les EF vont pouvoir interagir ร la fois entre eux, avec le CTD de la polymรฉrase et avec lโARN naissant (Battaglia et al, 2017; Jonkers & Lis, 2015). Lโรฉtat de phosphorylation du CTD joue un rรดle clรฉ dans leur recrutement. Les kinases Ctk1 et Bur1 sont en effet recrutรฉes par la phosphorylation S5P du CTD (cette modification va รชtre progressivement enlevรฉe par la phosphatase Ssu72 au cours de lโรฉlongation). Ces kinases vont pouvoir ร leur tour phosphoryler la sรฉrine 2 du CTD ainsi que la protรฉine Spt5 comprise dans le complexe DSIF (en association avec Spt4) pour permettre leur fonction de plate-forme molรฉculaire pour le recrutement dโautres EF. Parmi ces EF, on compte notamment les complexes Paf, FACT et le facteur dโรฉlongation Spt6. Dโautre part, DSIF va aider ร prรฉvenir les pauses de lโARN pol II en cours dโรฉlongation, en coopรฉration avec le facteur dโรฉlongation TFIIS qui va intervenir en cas de blocage de lโenzyme sur sa matrice (Battaglia et al, 2017; Meinhart et al, 2005; Jonkers & Lis, 2015; Hahn, 2004). Les EF sont interdรฉpendants, et coopรจrent dans le but ultime de permettre la progression de la polymรฉrase ร travers la barriรจre physique reprรฉsentรฉe par la chromatine, ainsi que le repositionnement des nuclรฉosomes pour refermer la chromatine aprรจs son passage. Pour cela des modifications de la chromatine vont รชtre nรฉcessaires.
Modifications co-transcriptionnelles de la chromatine
La polymรฉrase en cours dโรฉlongation doit dรฉplacer les nuclรฉosomes pour accรฉder ร la matrice dโADN. Les gรจnes fortement transcrits seront dโailleurs caractรฉrisรฉs par un espacement inter-nuclรฉosomal plus petit sur la rรฉgion codante. Si la transcription est trรจs forte, on observera mรชme une diminution dโoccupation des nuclรฉosomes sur la rรฉgion codante (Rando & Winston, 2012). Ces remodelages de la chromatine sont permis par la coopรฉration de plusieurs facteurs de modification de la chromatine, dont le recrutement est orchestrรฉ par les modifications du CTD de la polymรฉrase II.
Rรดle complexe de la mรฉthylation par Set1 apposรฉe en cours dโรฉlongation
Set1 est une histone-mรฉthyl transfรฉrase appartenant au complexe COMPASS qui est recrutรฉ au cours de la transcription. Set1 interagit directement avec la polymรฉrase par la phosphorylation en sรฉrine 5 du CTD, mais elle possรจde รฉgalement un domaine de reconnaissance ร des motifs sur lโARN. Dโautre part, son action est dรฉpendante de la prรฉsence du facteur dโรฉlongation Paf et dโune mono-ubiquitinylation de la lysine 123 de lโhistone H2B. Le profil de mรฉthylation gรฉnรฉrรฉ par Set1 varie suivant la rรฉgion transcrite avec un gradient de mรฉthylation H3K4 le long des gรจnes activement transcrits. En effet, la rรฉgion 5โ en amont du TSS correspondant au moment de lโinitiation de la transcription, est ciblรฉe par une trimรฉthylation H3K4. Cette modification est une marque de la transcription active et est notamment reconnue par le domaine PHD des complexes Histone-acรฉtyl transfรฉrase (HAT) Nua3, Nua4, Hbo1 et SAGA. Ces complexes rรฉgulent positivement la transcription gรฉnique car ils permettent une acรฉtylation de la chromatine au niveau des promoteurs. En revanche, les di-mรฉthylations seront plutรดt prรฉsentes en 5โ mais en aval du TSS (correspondant ร lโรฉlongation prรฉcoce) et sont lues par le chromo-domaine de la protรฉine Set3 comprise dans le complexe Set3C รฉgalement constituรฉ des deux histone-dรฉacรฉtylases (HDAC) Hos1 et Hst1. Ce complexe a ร la fois un rรดle positif et nรฉgatif pour la transcription gรฉnique. En effet, il a รฉtรฉ montrรฉ quโil permet de contrรดler la cinรฉtique dโinduction des gรจnes (Kim et al, 2012), mais il est gรฉnรฉralement connu pour son effet rรฉpresseur sur la transcription (van Werven et al, 2012). Les mono-mรฉthylations sont plutรดt distribuรฉes dans le corps de la rรฉgion transcrite (Woo et al, 2017; Rando & Winston, 2012; Millar & Grunstein, 2006).
Coopรฉration de lโHMT Set2 avec les facteurs dโรฉlongation pour refermer la chromatine aprรจs le passage de la polymรฉrase
Set2 est une HMT H3K36 qui se lie aux marques S5P et S2P du CTD. Elle est ร lโorigine dโune tri-mรฉthylation H3K36me3 sur le corps des gรจnes activement transcrits. Sa fonction principale est le recrutement du complexe Rpd3S par le chromo-domaine dโun de ses constituants Eaf3, conduisant ainsi ร une dรฉacetylation par lโHDAC Rpd3. La marque H3K36me3 est รฉgalement liรฉe par le complexe ISW1. Ces deux complexes sont ร lโorigine dโune dรฉacetylation et dโun remodelage, importants aprรจs le passage de la polymรฉrase II pour refermer la structure de la chromatine et la rendre incompรฉtente pour une initiation transcriptionnelle (Woo et al, 2017; Rando & Winston, 2012; Millar & Grunstein, 2006).
Ea3f entre รฉgalement dans la composition du complexe NuA4, et deux composants de NuA3 (Nto1 et Pdp3) reconnaissent รฉgalement la mรฉthylation H3K36me3. Cela suggรจre que Set2 pourrait aussi avoir un rรดle opposรฉ, pour le recrutement dโHAT pendant la transcription (Woo et al, 2017).
Contrรดle nuclรฉaire conduisant ร la dรฉgradation des transcrits cryptiques
Le systรจme de contrรดle de la transcription pervasive en aval de lโinitiation transcriptionnelle fait intervenir la voie de terminaison Nrd1-Nab3-Sen1, ou NNS, qui est รฉgalement utilisรฉe pour la terminaison des snoRNA.
Cette terminaison est permise par les facteurs Nrd1 et Nab3 qui reconnaissent spรฉcifiquement des petites sรฉquences sur lโARN transcrit (GUAA/G pour Nrd1 et UCUUG pour Nab3). Lโรฉtat de phosphorylation du CTD est dรฉterminant dans le recrutement du complexe NNS. En effet, Nrd1 interagit directement avec le CTD S5P via son domaine CID. Le gradient de phosphorylation du CTD impacte donc fortement le choix de la voie utilisรฉe pour la terminaison de la transcription, avec une marque S5P qui favorisera plutรดt la terminaison NNS, tandis que la marque S2P favorisera la terminaison CPF-CF (Gudipati et al, 2008).
Nrd1 et Nab3 forment un complexe avec lโhรฉlicase ADN Sen1 qui, en interaction avec lโARN natif et grรขce ร une hydrolyse dโATP, conduit ร une dissociation du complexe de transcription de la matrice ADN. Le facteur Nrd1 รฉchangera ensuite son interaction avec le CTD pour interagir avec le facteur Trf4 appartenant au complexe Trf4-Air2-Mtr4 (TRAMP) (Tudek et al, 2014). La polyadรฉnylation du transcrit par le complexe TRAMP permet dโen faire une cible pour la dรฉgradation par lโexosome nuclรฉaire (Figure 9) (Porrua et al, 2016, 2012; Colin et al, 2011).
Lโexosome est un complexe protรฉique permettant la maturation et la dรฉgradation des ARN de lโextrรฉmitรฉ 3โ ร lโextrรฉmitรฉ 5โ. Le cลur de lโexosome est composรฉ dโune structure en anneau ou ยซ PH ring ยป formรฉe par les sous-unitรฉs Rrp41, Rrp42, Rrp43, Rrp45, Rrp46 et Mtr3. Lโanneau est stabilisรฉ par une coiffe protรฉique ou ยซ S1-KH cap ยป contenant les sous-unitรฉs Rrp4, Csl4 et Rrp40 qui participe ร la fixation ร lโARN et la reconnaissance des substrats. Cette coiffe permet ร lโARN de passer ร travers le tunnel formรฉ par lโanneau, en se positionnant ร son entrรฉe. En plus de ces sous-unitรฉs structurales, lโexosome contient des sous-unitรฉs catalytiques reprรฉsentรฉes par les exonuclรฉases. Dis3 (ou Rrp44) est commune, chez la levure bourgeonnante, aux exosomes nuclรฉaire et cytoplasmique, alors que Rrp6 qui est spรฉcifique ร lโexosome nuclรฉaire (Revues par Sloan et al, 2012; Kilchert et al, 2016) (Figure 10).
Surveillance cytoplasmique des ARN : la voie du Nonsense-mediated mRNA decay (NMD)
Les lncARN qui ont รฉchappรฉ au contrรดle nuclรฉaire de la transcription pervasive sont exportรฉs vers le cytoplasme. Ces ARN pervasifs peuvent y รชtre dรฉlรฉtรจres : sโils sโaccumulent et entrent dans un cycle traductionnel, ils sont susceptibles de mobiliser les ribosomes ou leurs produits de traduction peuvent รชtre toxiques, par exemple sโils saturent les machineries de surveillance des protรฉines mal repliรฉes. Cependant, le fait quโils ne possรจdent pas de longues phases codantes mais seulement de trรจs courtes phases ouvertes alรฉatoires en font des cibles privilรฉgiรฉes pour le contrรดle-qualitรฉ cytoplasmique constituรฉ par la voie du ยซ Nonsense-mediated mRNA Decay ยป (NMD).
La voie du NMD intervient aprรจs lโexport des ARN transcrits vers le cytoplasme et est couplรฉe ร la traduction par les ribosomes. On peut distinguer au moins 4 รฉtapes successives pour la traduction : lโinitiation, lโรฉlongation, la terminaison et le recyclage des ribosomes. Pendant lโinitiation de la traduction, la petite sous-unitรฉ ribosomale (40S) se lie ร lโARNt spรฉcifique ร la mรฉthionine et ร lโARNm. Aprรจs sรฉlection du triplet AUG ou codon START dโinitiation de la traduction sur lโARNm, cette petite sous-unitรฉ est rejointe par la grosse sous-unitรฉ ribosomale (60S) pour former le ribosome fonctionnel (80S). Pendant la phase dโรฉlongation, le ribosome utilise les ARNt pour lire les codons de lโARNm et ajouter les acide-aminรฉs successifs ร la chaรฎne peptidique naissante. La terminaison de la traduction comprend la reconnaissance dโun codon STOP sur la sรฉquence de lโARNm, la libรฉration du peptide synthรฉtisรฉ et la dissociation du ribosome pour son recyclage (Dever et al, 2016).
Lโabsence dโune capacitรฉ codante suffisante de lโARN traduit, une rรฉtention dโintron, ou encore la prรฉsence dโune uORF, notamment, peuvent conduire ร la reconnaissance dโun codon STOP prรฉcoce PTC pour ยซ Premature Termination Codon ยป par le ribosome, et ร un dรฉfaut de terminaison traductionnelle.
Chez la levure, le modรจle du faux 3โ UTR a รฉtรฉ proposรฉ pour expliquer comment les codons PTC sont distinguรฉs des codons STOP normaux. Dans ce modรจle, la terminaison normale de la traduction fait intervenir une interaction entre la protรฉine liรฉe ร la queue poly-A, (PAPB, Pab1 chez la levure), et le facteur eRF3 liรฉ au ribosome en cours de terminaison. Or, lorsquโun PTC est prรฉsent, le ribosome en cours de terminaison est รฉloignรฉ de la PAPB dont la concentration locale est donc plus faible que pour un ARNm normal. Upf1, une hรฉlicase constituant lโun des facteurs centraux du NMD, peut alors, en association avec ses rรฉgulateurs Upf2 et Upf3, entrer en compรฉtition favorable avec PAPB pour interagir avec eRF3 (Amrani et al, 2004; Brogna & Wen, 2009). Par ailleurs, la rรฉgion en amont du codon STOP semble aussi jouer un rรดle dans la sรฉlection de cibles du NMD puisque, pour un 3โ UTR de taille donnรฉe, des transcrits avec une courte phase ouverte de lecture seront prรฉfรฉrentiellement reconnus par Upf1 (Decourty et al, 2014).
Dรฉveloppement dโun systรจme rapporteur pour lโรฉtude des mรฉcanismes dโinterfรฉrence transcriptionnelle
Pour rรฉpondre aux problรฉmatiques soulevรฉes par les rรฉsultats prรฉcรฉdents, ma thรจse a dโabord consistรฉ ร essayer de mettre au point un systรจme permettant de reproduire le phรฉnomรจne dโinterfรฉrence transcriptionnelle au niveau dโun gรจne rapporteur. Lโidรฉe รฉtait en effet de pouvoir quantifier lโexpression dโun gรจne rรฉgulรฉ par interfรฉrence transcriptionnelle sans obligation de mesure de lโabondance de lโARNm, pour rรฉaliser des tests phรฉnotypiques aprรจs association du gรจne rapporteur ร diffรฉrentes combinaisons de promoteurs gรฉniques et cryptiques. Nous souhaitions รฉgalement utiliser le systรจme pour rรฉaliser des cribles gรฉnรฉtiques.
Systรจme rapporteur CUP1
Le premier des deux systรจmes rapporteurs construit est une association du gรจne CUP1 ร une combinaison de promoteurs sens et antisens diffรฉrents, afin de pouvoir observer les consรฉquences de phรฉnomรจnes dโinterfรฉrence transcriptionnelle sur la rรฉsistance cellulaire au cuivre. Ce systรจme prรฉsente lโavantage de permettre une rรฉponse phรฉnotypique graduelle aux rรฉgulations transcriptionnelles en jouant sur la concentration en cuivre dans le milieu, et donc de mieux dรฉtecter de faibles variations du niveau dโexpression du gรจne rapporteur. Pour sโaffranchir dโune dรฉplรฉtion de Nrd1 qui est nรฉfaste pour les cellules, la copie du gรจne CUP1 du systรจme rapporteur a รฉtรฉ mutรฉe pour supprimer les sites de terminaisons NNS en antisens. Cette construction peut de plus รชtre intรฉgrรฉe dans le gรฉnome au niveau du locus CUP.
Afin de vรฉrifier que cette construction permette de reproduire et dโรฉtudier le phรฉnomรจne dโinterfรฉrence transcriptionnelle, jโai associรฉ ce systรจme rapporteur aux promoteurs sens et antisens dโun gรจne connu pour sa rรฉgulation par ce phรฉnomรจne, le gรจne CPS1. Ce gรจne codant pour une carboxypeptidase vacuolaire est associรฉ ร un CUT antisens initiรฉ en 3โ. En lโabsence de NRD1, lโallongement de son transcrit antisens au-delร du TSS de CPS1 conduit ร une forte rรฉpression de lโexpression du gรจne (Figure 17).
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Table des matiรจres
INTRODUCTION
I. LA TRANSCRIPTION GENIQUE
1. INITIATION DE LA TRANSCRIPTION
2. ELONGATION DE LA TRANSCRIPTION
3. TERMINAISON DE LA TRANSCRIPTION
II. LA TRANSCRIPTION PERVASIVE
1. CONTROLE DE LโINITIATION DE LA TRANSCRIPTION PERVASIVE
2. CONTROLE NUCLEAIRE CONDUISANT A LA DEGRADATION DES TRANSCRITS CRYPTIQUES
3. SURVEILLANCE CYTOPLASMIQUE DES ARN : LA VOIE DU NONSENSE-MEDIATED MRNA DECAY (NMD)
4. MISE EN EVIDENCE DES TRANSCRITS PERVASIFS DANS LA CELLULE
III. ROLES DE LA TRANSCRIPTION PERVASIVE
1. FONCTIONNALITE EN TRANS
2. FONCTIONNALITE EN CIS
IV. PROJET DE THESE
RESULTATS
I. DESCRIPTION DES MECANISMES DโINTERFERENCE TRANSCRIPTIONELLE CHEZ SACCHAROMYCES CEREVISIAE
1. RESULTATS PRECEDENTS
2. DEVELOPPEMENT DโUN SYSTEME RAPPORTEUR POUR LโETUDE DES MECANISMES DโINTERFERENCE TRANSCRIPTIONNELLE
II. ROLE DE PHENOMENES DโINTERFERENCE TRANSCRIPTIONNELLE LIES A LA TRANSCRIPTION
ANTISENS DANS LA REGULATION NATURELLE DE LโEXPRESSION GENIQUE (MANUSCRIT DE LโARTICLE)
DISCUSSIONS ET PERSPECTIVES
CONCLUSION
MATERIELS ET METHODES
BIBLIOGRAPHIE
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