RAPPELS SUR LES RADICAUX LIBRES ET LES ANTIOXYDANTS

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Action sur les protรฉines

Les protรฉines cellulaires sont une cible idรฉale de lโ€™attaque radicalaire qui se situe ร  diffรฉrents niveaux. Les groupements sulfhydriles, prรฉsent dans de nombreuses membranes dโ€™enzymes, subissent sous lโ€™action des RL, une dรฉshydrogรฉnation avec crรฉation de ponts disulfures et inactivation de ces enzymes (Logani et Davies, 1980).
Des cas dโ€™activation enzymatiques peuvent รชtre rencontrรฉs lors de lโ€™inactivation dโ€™un inhibiteur spรฉcifique :
โ€ข Les protรฉines de structure sont dรฉpolymรฉrisรฉes (acide hyaluronique) sous lโ€™action des RL ou polymรฉrisรฉes de faรงon anarchique. Ainsi, le collagรจne est dรฉgradรฉ avec malformation des fibres et fragilisation des vaisseaux sanguins ( Halliwell et Gutteridge, 1989).
โ€ข Les acides aminรฉs peuvent รชtre modifiรฉs. Par exemples, lโ€™action de lโ€™oxygรจne singulet sur la mรฉthionine donne la mรฉthionine sulfoxyde (Halliwell et Gutteridge, 1989).
โ€ข Le radical hydroxyle rรฉagit avec la phรฉnylalanine et donne lโ€™ortho-tyrosine ou le para- tyrosine.

Action sur les acides nuclรฉiques

Les acides nuclรฉiques sont particuliรจrement sensibles ร  lโ€™action des RL qui crรฉent des sites radicalaires au sein de la molรฉcule et peuvent ainsi induire des effets mutagรจnes ou lโ€™arrรชt des rรฉplications.
Outre cette action directe sur lโ€™ADN, les radicaux libres altรจrent la synthรจse et la rรฉplication de lโ€™ARN. Cette attaque provoque une baisse de concentration intracellulaire de la coenzyme NAD+, secondaire ร  son clivage par lโ€™enzyme poly (ADP-ribose) synthรฉtase, avec transfert de lโ€™ADP-ribose sur la protรฉine nuclรฉaire (Hoff et Oโ€™Neill, 1991).

Action sur les lipides

Les RL peuvent attaquer les lipides et notamment les acides gras mono et polyinsaturรฉs (AGPI) des phospholipides membranaires et sont ร  lโ€™origine des rรฉactions de peroxydation (Morelle et al, 1998).
Il sโ€™agit dโ€™une succession de rรฉactions radicalaires ร  lโ€™origine de la libรฉration de molรฉcules rรฉactives. En lโ€™absence dโ€™antioxydants, la rรฉaction sโ€™auto-entretient car les espรจces produites peuvent ร  nouveau rรฉagir entre elles. Cette rรฉaction est ร  lโ€™origine de la formation dโ€™hydroperoxydes lipidiques. Ceux-ci sโ€™accumulant dans la membrane, entrainent ainsi la diminution de sa fluiditรฉ et de sa permรฉabilitรฉ. Sa fonction รฉtant complรจtement perturbรฉe, la membrane se dรฉsorganise. Si les dรฉgรขts sont trop importants, les peroxydes lipidiques peuvent aussi rรฉagir avec dโ€™autres composรฉs cellulaires et รชtre ร  lโ€™origine de molรฉcules trรจs toxiques. Par exemple, ils peuvent rรฉagir avec lโ€™ADN et รชtre ร  lโ€™origine de substances mutagรจnes.

Systรจmes antioxydants

Ces systรจmes peuvent รชtre dโ€™origine endogรจne ou exogรจne.

Systรจmes antioxydants endogรจnes

Systรจmes enzymatiques

Superoxydes dismutase

Les superoxydes dismutases (SOD) sont des mรฉtalloprotรฉines responsables de la dismutation spontanรฉe du radical superoxyde en peroxyde dโ€™hydrogรจne selon la rรฉaction ci- dessous. 2O2โ—ห— + 2H+ H2O2 + O2
Elles sont de trois types :
– une SOD ร  cuivre et ร  zinc (Cu/Zn-SOD), intercellulaire, situรฉe dans le cytoplasme et dans lโ€™espace inter-membranaire des mitochondries ; elle exerce une action antioxydante importante dans lโ€™espace intermรฉdiaire mitochondriale oรน il y a une accumulation importante de protons.
– une autre SOD ร  cuivre et ร  zinc est extracellulaire, localisรฉe principalement dans la matrice extracellulaire des tissus et ร  un degrรฉ moindre dans les liquides extracellulaires des tissus (plasma, lymphe) ; elle joue un rรดle important dans la protection des surfaces cellulaires et des protรฉines de la matrice extracellulaire contre lโ€™action des O2โ—ห—.
– une SOD ร  manganรจse (Mn-SOD) qui est situรฉe ร  la fois dans la matrice et au niveau de la membrane interne de la mitochondrie.
Le peroxyde dโ€™hydrogรจne formรฉ peut รชtre ร  son tour รฉliminรฉ par deux autres enzymes : la catalase et la glutathion peroxydase (Beguel, 2012).

La catalase

La catalase est une enzyme composรฉe de quatre chaines polypeptidiques. Son site catalytique permet lโ€™รฉlimination du peroxyde dโ€™hydrogรจne, prรฉsent ร  haute concentration.

Glutathion peroxydase

La glutathion peroxydase (GPX) est une enzyme dรฉpendante du sรฉlรฉnium qui a une forte affinitรฉ pour le peroxyde dโ€™hydrogรจne; elle permet donc lโ€™รฉlimination du peroxyde dโ€™hydrogรจne, mรชme prรฉsent ร  faible concentration.
Le maintien de lโ€™activitรฉ de la GPX nรฉcessite la rรฉgรฉnรฉration du glutathion (GSH) assurรฉe par la glutathion rรฉductase.

Systรจmes non enzymatiques

Le glutathion

Le glutathion est un tripeptide (acide glutamique-cystรฉine-glycine). Il est le thiol (-SH) majoritaire au niveau intracellulaire (lโ€™albumine รฉtant son รฉquivalent plasmatique) ou il est prรฉsent sous forme essentiellement rรฉduite (GSH).
Dans des conditions physiologiques, sa forme oxydรฉe(GSSG) est en concentration trรจs faible. Le rapport GSH/GSSG est considรฉrรฉ comme un excellent marqueur de la peroxydation lipidique et permet dโ€™objectiver lโ€™importance du stress.
Lors du vieillissement ou dโ€™un exercice intense, ce rapport tend ร  diminuer. Les autres propriรฉtรฉs antioxydantes du GSH sont nombreuses : cofacteur de la GPX, chรฉlateur des mรฉtaux de transition, rรฉgรฉnรฉrateur final des vitamines E et C ร  partir de leur formes radicalaires (Wang, 1997).

La bilirubine

La bilirubine est un produit de la dรฉgradation de lโ€™hรจme et rรฉsulte essentiellement du catabolisme de lโ€™hรฉmoglobine par les cellules rรฉticulo-endothรฉliales. Composรฉ non hydrosoluble, elle se lie ร  lโ€™albumine dans un rapport stล“chiomรฉtrique 1/1, ce qui empรชche sa pรฉnรฉtration dans les tissus riches en lipides tel que le cerveau. La bilirubine est capable de piรฉger le radical peroxyde et lโ€™oxygรจne singulet. Ainsi, elle protรจge lโ€™albumine et les acides gras liรฉe ร  lโ€™albumine des attaques radicalaires.

Lโ€™acide urique

Lโ€™acide urique est un produit terminal majeur du mรฉtabolisme des purines chez lโ€™homme. Il est ร  pH physiologique majoritairement ionisรฉ sous forme dโ€™urate, un piรฉgeur puissant des radicaux libres (OHโ—, ROOโ—, NOOโ— โ€ฆ). Ces rรฉactions conduisent ร  des espรจces radicalaires qui seront ร  leur tour rรฉduites (notamment la vitamine C). Les antioxydants de lโ€™urate in vivo peuvent รชtre apprรฉciรฉes indirectement par le fait quโ€™un produit de rรฉaction de lโ€™urate avec les EOA, Lโ€™allantoรฏne, est prรฉsent ร  des taux รฉlevรฉs lors dโ€™un stress oxydant (Delattre et al., 2005).

Le coenzyme Q10

Le coenzyme Q10 appelรฉ ubiquinone en raison de son ubiquitรฉ dans les cellules, est un dรฉrivรฉ benzoquinolique avec une longue chaine latรฉrale isoprรฉnique. Cette chaine confรจre ร  la molรฉcule un caractรจre lipophile qui lui permet de sโ€™insรฉrer dans les membranes et les lipoprotรฉines. Il joue un rรดle essentiel dans la chaine mitochondriale de transport dโ€™รฉlectron et est un puissant inhibiteur de peroxydation lipidique, en synergie avec la vitamine E.
Les ล“strogรจnes, la mรฉlanine, la mรฉlatonine et lโ€™acide lipoรฏque peuvent รฉgalement รชtre comptรฉs au nombre des antioxydants non enzymatiques endogรจnes (Nakamura et al.,1980).

Antioxydants exogรจnes

Vitamine C

La plupart des mammifรจres sont capables de synthรฉtiser la vitamine C au niveau du foie ou des reins. Ce nโ€™est pas le cas de lโ€™homme qui doit assurer un apport journalier dโ€™environ 100mg via une alimentation. La vitamine C, illustrรฉe par la figure 3, est un excellent piรฉgeur des EOA (OHโ— ou O2โ—ห—). Elle inhibe รฉgalement la peroxydation lipidique en rรฉgรฉnรฉrant la vitamine E ร  partir de la forme radicalaire issue de sa rรฉaction avec les radicaux lipidiques. Ses fonctions sont nombreuses : contribution au bon fonctionnement du systรจme immunitaire, implication dans la synthรจse du collagรจne et des globules rouges ainsi que dans les mรฉcanismes de mรฉtabolisation du fer (Blot et al.,1993).

Extraction et fractionnement

Obtention de lโ€™extrait

Cinquante-six grammes (56g) de poudre de feuilles de Combretum paniculatum sont portรฉes ร  รฉbullition modรฉrรฉe sous reflux dans 1L dโ€™รฉthanol ร  90หš pendant 30 minutes. Cette opรฉration est effectuรฉe ร  deux reprises. Aprรจs filtration ร  chaud, les extraits sont ensuite rรฉunis. Le filtrat est รฉvaporรฉ ร  sec ร  lโ€™aide dโ€™un รฉvaporateur rotatif afin dโ€™obtenir un extrait sec รฉthanolique. Une partie de cet extrait sec est ensuite soumise ร  un fractionnement liquide-liquide.

Fractionnement liquide-liquide

Le fractionnement de lโ€™extrait รฉthanolique a รฉtรฉ rรฉalisรฉ avec des solvants de polaritรฉ croissante (chloroforme, acรฉtate dโ€™รฉthyle et eau). Ainsi, lโ€™extrait sec รฉthanolique est dissous dans 500ml dโ€™eau distillรฉe. La solution aqueuse est ensuite รฉpuisรฉe trois fois de suite par 400ml de dichloromรฉthane. Les phases dichloromรฉhaniques sont rassemblรฉes puis รฉvaporรฉes ร  sec pour donner la fraction dichloromรฉhanique.
La phase aqueuse est soumise de nouveau ร  une extraction liquide-liquide avec de lโ€™acรฉtate dโ€™รฉthyle dans les mรชmes conditions que prรฉcรฉdemment. Les phases dโ€™acรฉtate dโ€™รฉthyle et aqueuses sont rassemblรฉes sรฉparรฉment puis รฉvaporรฉes permettant dโ€™obtenir les fractions correspondantes.

Activitรฉ antioxydante par la mรฉthode FRAP
Protocole expรฉrimental
Le pouvoir rรฉducteur a รฉtรฉ dรฉterminรฉ suivant la mรฉthode dรฉcrite par Oyaizu (1986). Ainsi, 1 ml dโ€™extrait ou de fractions ร  diffรฉrentes concentrations diluรฉ dans de lโ€™eau distillรฉe est mรฉlangรฉ avec 2,5 ml de la solution de tampon phosphate (0,2 M; pH 6,6) et 2,5 ml de ferricyanure de potassium (K3Fe(CN)6) ร  1% dans un tube ร  essai. Ensuite 2,5 ml dโ€™acide trichloracรฉtique (10%) sont ajoutรฉs ร  chaque tube aprรจs une incubation de 30 minutes ร  50หšC. Le tout est ensuite centrifugรฉ ร  3000 tours par minute pendant 10 minutes. Puis 2,5 ml du surnageant sont mรฉlangรฉs avec 2,5 ml dโ€™eau distillรฉe et 0,5 ml de FeCl3 (0,1%). Les absorbances sont lues ร  700 nm ร  lโ€™aide dโ€™un spectrophotomรจtre.
Trois mรฉsures sont effectuรฉes pour chaque concentration de produit testรฉ (n=3).
Lโ€™extrait รฉthanolique, ses fractions dichloromรฉthanique, dโ€™acรฉtate dโ€™รฉthyle, aqueuse et lโ€™acide ascorbique (choisi comme antioxydant de rรฉfรฉrence) sont testรฉs aux concentrations suivantes : 15,62-31,25 -62,5 -125 et 250ยตg/ml.
Expression des rรฉsultats et analyses statistiques
Lโ€™activitรฉ antioxydante, qui exprime les capacitรฉs de lโ€™extrait ร  rรฉduire le fer, est estimรฉe par les valeurs des absorbances obtenues en fonction des concentrations utilisรฉes. Une croissance de lโ€™absorbance suivant celle de la concentration correspond ร  une augmentation du pouvoir rรฉducteur (PR) des produits testรฉs. Le pouvoir rรฉducteur, exprimรฉ en pourcentage, est obtenu ร  partir de la formule suivante : PR = A1- A0 x 100 A0
Les analyses statistiques des rรฉsultats sont effectuรฉs ร  lโ€™aide du logiciel ยซ Statview ยป en procรฉdant ร  une analyse normale des variantes (ANOVA) ร  lโ€™aide du test de Fisher. La diffรฉrence est considรฉrรฉe significative si p<0,05 versus tรฉmoin nรฉgatif.

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Table des matiรจres

INTRODUCTION
PREMIERE PARTIE : RAPPELS BIBLIOGRAPHIQUES
CHAPITRE I : PRESENTATION DE COMBRETUM PANICULATUM VENT(COMBRETACEAE)
I.1. SYNONYMES ET DENOMINATIONS
I.1.1. Synonymes
I.1.2. Dรฉnominations particuliรจres
I.2. BOTANIQUE
I.2.1.Position taxonomique
I.2.2. Description botanique
I.3 REPARTITION GEOGRAPHIQUE
I.4. CHIMIE
I.5. PHARMACOLOGIE
I.5.1. Usages ethnopharmacologiques
I.5.2. Propriรฉtรฉs pharmacologiques
CHAPITRE II : RAPPELS SUR LES RADICAUX LIBRES ET LES ANTIOXYDANTS
II.1.Dรฉfinition
II.2. Espรจces rรฉactives de lโ€™oxygรจne
II.2.1. Le radical superoxyde
II.2.2. Le radical hydroxyle
II.2.3. Le peroxyde dโ€™hydrogรจne
II.3. Consรฉquences molรฉculaires du stress oxydant
II.3.1. Action sur les protรฉines
II.3.2. Action sur les acides nuclรฉiques
II.3.3. Action sur les lipides
II.4. Systรจmes antioxydants
II.4.1. Systรจmes antioxydants endogรจnes
II.4.1.1. Systรจmes enzymatiques
a. Superoxydes dismutase
b. La catalase
c. Glutathion peroxydase
II.4.1.2. Systรจmes non enzymatiques
a. Le glutathion
b. La bilirubine
c. Lโ€™acide urique
d. Le coenzyme Q10
II.4.2. Antioxydants exogรจnes
II.4.2.1. Vitamine C
II.4.2.2. Vitamine E
II.4.2.3. Oligo-elements
a. Le sรฉlรฉnium
b. Le cuivre
c. Le zinc
II.4.2.4. Les carotรฉnoides
II.4.2.5. Les polyphenols
CHAPITRE III : PRINCIPE DE LA METHODE FRAP
DEUXIEME PARTIE ETUDE EXPERIMENTALE
CHAPITRE I : MATERIEL ET METHODES
I.1 Matรฉriel et rรฉactifs
I.1.1. Matรฉriel vรฉgรฉtal
I.1.2. Le matรฉriel de laboratoire
I.1.3. Les principaux rรฉactifs utilisรฉs
I.2. Mรฉthodes
I.2.1.Extraction et fractionnement
I.2.1.1. Obtention de lโ€™extrait
I.2.1.2. Fractionnement liquide-liquide
I.2.2. Activitรฉ antioxydante par la mรฉthode FRAP
I.2.2.1 Protocole expรฉrimental
I.2.2.2. Expression des rรฉsultats et analyses statistiques
CHAPITRE II: RESULTATS
II.1. Teneur en eau
II.1 Rendements dโ€™extraction et de fractionnement
II.2 Activitรฉ antioxydante
II.2.1. Extrait รฉthanolique
CONCLUSION
REFERENCES
BIBLIOGRAPHIQUES

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