Les constructeurs aéronautiques

Table des matières

INTRODUCTION
CHAPITRE 1 REVUE DE LITTÉRATURE
1.1Contexte clinique
1.1.1Structure des artères
1.1.2L’anévrisme de l’aorte abdominale (AAA)
1.1.3Traitements des anévrismes de l’aorte abdominale
1.1.3.1Réparation endovasculaire (EVAR) vs. chirurgie ouverte
1.1.3.2Problématiques liées à l’EVAR
1.1.4Les biomatériaux utilisés actuellement pour les EC
1.1.5Innovations industrielles
1.1.6Conclusion et stratégie à la base du projet
1.2Interactions biologiques avec les matériaux
1.2.1Interactions biomatériau/protéines
1.2.2Interactions cellules/ surface
1.2.3Réaction immunitaire et guérison
1.3Modification de surface des biomatériaux vasculaires
1.3.1Modifications physicochimiques
1.3.1.1Modification de surface par plasma
1.3.1.2Modifications par voie humide
1.3.1.3Limites de modifications physico-chimiques
1.3.2Fonctionnalisation par ajout de biomolécules
1.3.2.1Libération progressive
1.3.2.2Immobilisation non spécifique ou aléatoire
1.3.2.3Immobilisation spécifique ou orientée
1.3.2.4Sous-couche antiadhésive pour l’immobilisation de biomolécules
1.4Biomolécules pour l’ingénierie tissulaire et la guérison vasculaire
1.4.1.1Molécules de la MEC
1.4.1.2Facteurs de croissance pour cellules vasculaires
1.5Travaux disponibles dans la littérature présentant des revêtements bioactifs baséssur des facteurs de croissance pour favoriser la guérison autour des EC
CHAPITRE 2 OBJECTIFS DU PROJET
CHAPITRE 3 ÉVALUATION IN VITRO ET IN VIVO D’UN REVÊTEMENT BIOACTIF POUR ENDOPROTHÈSE COUVERTE BASÉ SUR LA CHONDROITINE SULFATE ET LE FACTEUR DE CROISSANCE DE L’ÉPIDERME
3.1 Mise en contexte
3.2ABSTRACT
3.3INTRODUCTION
3.4METHODS
3.4.1Coating preparation
3.4.1.1L-PPE:N deposition
3.4.1.2CS and EGF grafting
3.4.2Chemical and Mechanical Characterization
3.4.2.1Surface composition and morphology
3.4.2.2E-modulus and tensile strength
3.4.3Biological characterization
3.4.3.1Cell culture materials
3.4.3.2Cell survival on PET films
3.4.3.3 AoSMC survival on ePTFE membranes
3.4.3.4 Cell morphology on ePTFE membranes
3.4.4Durability of the coatings
3.4.5Coating transfer onto stent-grafts
3.4.5.1Coating procedure on SG
3.4.5.2Coating homogeneity and adhesion on SG
3.4.6In vivo implantation procedure
3.4.7Statistical analysis
3.5RESULTS
3.5.1Human vascular cell adhesion and survival on coated PET surfaces
3.5.2Transfer onto PTFE substrates
3.5.2.1Physical and Chemical characterization
3.5.2.2 Coating adhesion and resistance to ePTFE SG deployment
3.5.2.3Biological characterization
3.5.3 Stability of LP/CS/EGF coatings on ePTFE
3.5.4 In vivo testing
3.6DISCUSSION
3.7CONCLUSION
CHAPITRE 4 EFFETS BÉNÉFIQUES ADDITIFS DE LA CHONDROITINE SULFATE ET DU FACTEUR DE CROISSANCE DE L’ÉPIDERME IMMOBILISÉ DE FAÇON ORIENTÉE POUR LA SURVIE DES CELLULES MUSCULAIRES LISSES VASCULAIRES
4.1 Mise en contexte
4.2Abstract
4.3Introduction
4.4Materials and methods
4.4.1Materials and reagents
4.4.2 Kcoil and Ecoil-tagged EGF Production
4.4.3CS, CMD and EGF Immobilization
4.4.3.1Surface and Polymer Preparation
4.4.3.2Polymer Grafting on Aminated Silicon Surfaces and Aminated Microplates
4.4.3.3EGF Covalent Immobilization on CMD- and CS-coated surfaces
4.4.3.4 Ecoil-Tagged EGF Capture on Kcoil Layers
4.4.4Physical and chemical characterization
4.4.4.1Ellipsometry
4.4.4.2Water contact angle
4.4.4.3Surface EGF quantification by ELISA
4.4.5Cellular assays
4.4.5.1Cell culture materials
4.4.5.2Cell survival in serum-free medium
4.4.5.3Cell apoptosis
4.4.6Statistical analysis
4.5Results
4.5.1Characterization of oriented EGF immobilization on CS via coiled-coil interaction
4.5.2ELISA quantification of immobilized EGF
4.5.3 Bioactivity of the coatings
4.5.3.1 Cell adhesion and survival
4.5.3.2 Cell apoptosis
4.6Discussion
4.7Conclusions
CHAPITRE 5 CO-IMMOBILISATION CONTROLÉE DE FACTEUR DE CROISSANCE DE L’ÉPIDERME ET DE FACTEUR DE CROISSANCE DE L’ÉPITHÉLIUM VASCULAIRE POUR OPTIMISER LA SURVIE DES CELLULES VASCULAIRES
5.1Mise en contexte
5.2Abstract
5.3 Introduction
5.4Materials and methods
5.4.1Materials and Reagents
5.4.2 Kcoil, Ecoil-tagged EGF and Ecoil-tagged VEGF Production
5.4.3Chondroitin sulfate and Growth Factor Immobilization
5.4.3.1Chondroitin sulfate coating preparation
5.4.3.2 E-EGF and E-VEGF Capture on Kcoil Layers
5.4.4Surface growth factor quantification by ELISA
5.4.5Stability of coiled-coil immobilization
5.4.6Cellular assays
5.4.6.1Cell culture materials
5.4.6.2Cell survival in serum-free medium
5.4.7Statistical analysis
5.5RESULTS
5.5.1Characterization of immobilized growth factors
5.5.2Bioactivity of immobilized growth factors
5.5.2.1HUVEC
5.5.2.2 AoSMC
5.6DISCUSSION
5.7 CONCLUSION
CHAPITRE 6 DISCUSSION GÉNÉRALE
CONCLUSION
ANNEXE I STÉRILISATION DES REVÊTEMENTS L-PPEN et L-PPE:N+CS
LISTE DE RÉFÉRENCES BIBLIOGRAPHIQUES