Le virus de la dengue

Table des matières

PARTIE I : SYNTHESE BIBLIOGRAPHIQUE 
1. Le virus du chikungunya
1.3. Biologie moléculaire
1.3.1. Structure du virion
1.3.2. Génome
1.3.3. Cycle infectieux et réplication virale
1.3. Epidémiologie
1.3.1. Historique
1.3.2. Re-émergence du chikungunya
1.3.3. Vecteurs et réservoirs
1.4. Physiopathologie de l’infection
1.4.1. Symptômes
1.4.2. Dissémination du virus chez l’hôte vertébré
1.5. Traitements et vaccins
2. Le virus de la dengue
2.1. Taxonomie
2.2. Biologie moléculaire
2.2.1. Structure du virion
2.2.2. Génome
2.2.3. Cycle infectieux et réplication virale
2.3. Epidémiologie
2.4. Physiopathologie de l’infection
2.4.1. Symptômes
2.4.2. Dissémination du virus chez l’hôte vertébré
2.4.3. Facteurs de risque associés à la survenue de dengue sévère
3. Un vecteur commun : Aedes albopictus
3.1. Position systématique
3.2. Description morphologique
3.2.1. Adulte
3.2.3. Larve
3.2.4. Nymphe
3.3. Cycle de développement
3.4. Répartition géographique
3.5. Importance en santé publique
3.5.1. Nuisance et pathogénie non vectorielle
3.5.2. Le vecteur de nombreux arbovirus
3.5.2.1. Capacité vectorielle
3.5.2.2. Modalité du repas sanguin et transmission d’un arbovirus
3.5.2.3. Agents pathogènes transmis par Aedes albopictus
3.5.2.4. Rôle de la salive dans la transmission et la pathogénicité des arbovirus
3.6. Moyens de lutte contre Aedes albopictus
4. Objectifs du projet
PARTIE II : ETUDE EXPERIMENTALE 
1. Matériels et méthodes
1.1. Matériels d’étude
1.1.1. Elevage des Aedes albopictus
1.1.2. Souches virales utilisées
1.1.2.1. Virus CHIK
1.1.2.2. Virus DEN4
1.2. Protocole d’infection expérimentale des Aedes albopictus
1.3. Prélèvements des échantillons
1.3.1. Prélèvements de moustiques entiers pour immunohistochimie
1.3.2. Prélèvements des échantillons pour immunofluorescence
1.3.3. Prélèvements pour quantification du nombre de particules virales
1.3.4. Prélèvements pour analyse protéomique
1.3.5. Prélèvement de salive de moustique
1.4. Immunohistochimie et immunofluorescence
1.5. Quantification du nombre de copies d’ARN viral par RT-PCRq
1.5.1. Extraction de l’ARN de l’échantillon
1.5.2. RT-PCR
1.7. Analyse protéomique
1.7.1. Préparation des échantillons
1.7.2. Analyse par spectrométrie de masse
2. Résultats
2.1. Présence de CHIKV et de DENV4 dans l’organisme d’Aedes albopictus infectés expérimentalement
2.2. Présence de CHIKV et DENV4 dans la salive d’Aedes albopictus infectés expérimentalement
2.3. Cinétique d’infection d’Aedes albopictus par CHIKV et DENV4
2.3.1. Cinétique d’infection d’Aedes albopictus par CHIKV
2.3.2. Cinétique d’infection d’Aedes albopictus par DENV4
2.3.3. Cinétique de co-infection d’Aedes albopictus par CHIKV et DENV4
2.4. Protéomes de glandes salivaires et d’intestins moyens d’Aedes albopictus
2.4.1. Protéomes obtenus par la technique iTRAQ
2.4.2. Protéomes obtenus par la technique « label-free »
2.5. Protéomes d’Aedes albopictus infectés expérimentalement
3. Discussion
3.1. Les moustiques Aedes albopictus présents dans la région de Nice sont capables de transmettre à la fois
3.2. La co-infection de moustique Aedes albopictus par CHIKV et DENV4 potentialise l’infection du
moustique par CHIKV au détriment de DENV4
3.3. Les virus CHIKV et DENV4 influencent l’expression protéique de l’intestin moyen
3.3.1. Comparaison des résultats obtenus par la technique iTRAQ et par la technique « label-free »
3.3.2. Signification biologique de la modulation de la synthèse protéique
3.3.3. Conséquences de la modulation de la synthèse protéique sur la transmission d’arbovirus
CONCLUSION 
BIBLIOGRAPHIE