Inhibition de l’agrégation plaquettaire

Table des matières

1-Introduction
2-Objectif
2.1-Objectif général
2.2-Objectifs spécifiques
3-GENERALITE
3.1-Historique de la leishmaniose
3.1.1-Taxonomie et morphologie du vecteur
3.2-Identification et taxonomie des parasites du genre Leishmania
3.3-Epidémiologie de la leishmaniose
3.3.1-Répartition géographique de la leishmaniose cutanée au Mali
3.3.2-Réservoirs de parasite de la leishmaniose cutanée
3.4-Cycle de transmission de la leishmaniose cutanée
3.4.1-Parasite chez l’hôte mammifère
3.4.2-Parasite chez le phlébotome
3.5-Physiopathologie de la leishmaniose cutanée
3.6-Relation immunologique homme-vecteur
3.6.1-Quelques rôles pharmacologiques des protéines salivaires des phlébotomes
3.6.1.1-Inhibition de l’agrégation plaquettaire
3.6.1.2-Inhibition de la coagulation
3.6.1.3-Vasodilatation
3.6.1.4-Inhibition de la réaction inflammatoire
3.6.2-Immunomodulation par la salive: de la réponse immune innée à la réponse adaptative
3.6.3-Effet d’une pré-exposition répétée aux antigènes salivaires des vecteurs sur le développement de l’infection
3.7-Diagnostic de la leishmaniose cutanée
3.7.1-Diagnostic d’orientation ou clinique
3.7.2-Diagnostic biologique
3.7.2.1-Mise en évidence du parasite
3.7.2.2-L’examen direct après coloration
3.7.2.3-Culture
3.7.2.4-PCR
3.7.2.5-Sérologie
3.7.2.6-Diagnostic immunologique
3.7.2.7-Intradermoréaction à la leishmanine ou réaction de Monténégro (LST
3.8-3.8-Traitement des leishmanioses
3.8.1-Médicaments
3.8.1.1-Sels d’antimoine pentavalents (SbV)
3.8.1.2-Sels de pentamidine
3.8.1.3-Amphotéricine B et ses formulations lipidiques
3.8.1.5-Autres traitements
3.8.2-Indications
3.8.2.1-Leishmaniose cutanée
3.8.3-Moyens
3.8.4-Thermothérapie
3.9-Prophylaxie des réservoirs et des vecteurs
3.9.1-Prophylaxie individuelle
3.10-Approche vaccinale
4-MEHODOLOGIE
4.1-Cadre d’étude
4.2-Historique des sites d’étude
4.2.1-Relief
4.2.2-Climat
4.2.3-Végétation
4.2.4 La faune
4.3-Population d’étude
4.4-Type et période d’étude
4.5-Echantillonnage
4.5.1-Critères d’inclusion
4.5.2-Critères de non inclusion
4.6-Collecte des données
4.6.1-Prélèvement de sang
4.6.2-Identification des arthropodes hématophages
4.6.3-Extraction de la glande salivaire des arthropodes hématophages
4.6.4-Obtention de l’homogénat de la glande salivaire
4.6.5-Contrôle de qualité des pools salivaires
4.6.5.1-Dosage des protéines totales
4.6.5.2-Electrophorèse sur gel
4.6.6-Dosage du taux d’anticorps anti-salive de P. duboscqi par ELISA
4.6.6.1-Principe du test
4.6.7-Détermination de la spécificité du taux d’anticorps anti-salive
P. duboscqi
4.6.7.1-Analyse de réaction croisée par la technique d’ELISA
4.6.7.1.1-Mode opératoire
4.6.7.2-Analyse de réaction croisée par la technique de Western blot
4.6.7.2.1-Migration des protéines salivaires
4.6.7.2.2-Transfert des protéines sur la membrane
4.6.7.2.3-Blocage
4.6.7.2.4-Anticorps primaire
4.6.7.2.5-Anticorps secondaire
4.6.7.2.5-Révélation des protéines salivaires
4.7-Gestion et analyse des données
4.8-Considérations éthiques
5-RESULTATS
5.1-Caractéristiques sociodémographiques de l’échantillon μg/paire
5.2-Répartition du nombre de paires de glandes salivaires par arthropodes hématophages et la concentration protéique des pools
5.2.1-Dosage des protéines totales dans la salive
5.2.2-Analyse de l’expression des protéines salivaires
5.3-Détermination du taux anticorps anti-salive de P. duboscqi dans la population de Sougoula et de Kéména
5.5-Détermination de la spécificité de l’anticorps anti-salive de
P. duboscqi
5.5.1-Analyse de réaction croisée entre les protéines salivaires de P. duboscqi et An gambiae sl ou de C. quinquefasctus
5.5.1.1-Analyse de réaction croisée par la technique d’ELISA
5.5.1.2-Analyse de réaction croisée par la technique par Western Blot
6-Commentaires et discussion
7-Conclusion et recommandations
8-REFERENCES BIBLOGRAPHIQUES