Étude des lipides de l’extrait héxanique de Stylissa sp

Table des matières

INTRODUCTION GENERALE
PARTIE I : MICROORGANISMES ASSOCIES à Stylissa sp
I. Généralités
I.1. Éponges
I.1.1. Classification
I.1.2. Structure
I.1.3. Mode d’alimentation
I.1.4. Mode de reproduction
I.1.4.a. Reproduction sexuée
I.1.4.b. Reproduction asexuée
I.1.5. Biotope
I.2. Association Éponge-Microorganismes
I.2.1. Différents types d’association
I.2.2. Différents types de microorganismes associés aux éponges
I.3. Chimie des microorganismes marins
I.4. Propriétés biologiques des métabolites secondaires des microorganismes associés aux éponges
II. Matériels et méthodes
II.1. Matériel biologique
II.2. Isolement et identification préliminaire
II.2.1. Isolement et purification des microorganismes associés à l’éponge
II.2.1.a. Matériels utilisés
II.2.1.b. Désinfection en surface
II.2.1.c. Mise en culture
II.2.1.d. Vérification du procédé de désinfection en surface
II.2.2. Identification préliminaire
II.2.2.a. Matériels utilisés
II.2.2.b. Observation macroscopique des colonies : codage
II.2.2.c. Observation microscopique
II.2.2.d. Tests biochimiques
II.3. Conservation des souches bactériennes
II.3.1. Matériels utilisés
II.3.2. Méthode
II.4. Production et extraction des métabolites secondaires
II.4.1. Matériels utilisés
II.4.2. Préparation de l’inoculum
II.4.3. Étude de la croissance des souches bactériennes
II.4.4. Production de métabolites secondaires
II.4.5. Extraction des métabolites secondaires
II.5. Criblage biologique par la méthode de CCM Bioautographie directe
II.5.1. Matériels utilisés
II.5.2. Préparation du chromatogramme
II.5.3. Test antimicrobien
II.6. Criblage chimique des composés à activité antimicrobienne
II.6.1. Matériels utilisés
II.6.2. Méthodes
II.6.2.a. Criblage des composés azotés et des alcaloïdes
II.5.2.b. Criblage des composés terpéniques, stéroïdiques et phénoliques
II.6.2.c. Criblage des composés flavonoïdiques
II.6.2.d. Criblage des composés anthracéniques
II.6.2.e. Criblage des lipides et des phospholipides
III. Résultats et discussions
A. Caractérisation des microorganismes
B. Études des métabolites secondaires
C. Activités antimicrobiennes
D. Criblage chimique
CONCLUSION
PERSPECTIVES
PARTIE II : ETUDE DES LIPIDES DE L’EXTRAIT HEXANIQUE de Stylissa sp
I. Généralités
I.1. Lipides
I.1.1. Caractéristiques physiques
I.1.2. Fonction des lipides
I.1.3. Classification des lipides
I.2. Acides gras
I.2.1. Nomenclature des acides gras
I.2.1.a. Acides gras saturés
I.2.1.b. Acides gras insaturés
I.2.1.c. Acides gras ramifiés
I.2.1.d. Acide gras iso et anteiso
I.2.2. Longueur de chaîne équivalente (LCE)
I.3. Acides gras des éponges
I.3.1. Acides gras monoinsaturés Δ5 et Δ9
I.3.2. Acides gras diinsaturés Δ5,9
I.3.3. Acides gras insaturés « non-methylene interrupted »
I.3.4. Acides gras ramifiés
I.3.5. Acides gras iso et anteiso
I.3.6. Acides α-hydroxylés et α-méthoxylés
I.3.7. Acides isoprénoïques
1.4. Stéroïdes
I.4.1. Acides nor-19-stanol et nor-A-stanol
1.5. Biosynthèse des terpènes
I.6. Activité biologique des acides Δ5,9
I.7. Chromatographie
I.7.1. Chromatographie sur couche mince (CCM)
I.7.2. Chromatographie en phase gazeuse (CPG)
I.8. Spectroscopie de masse (SM)
I.9. Chromatographie en phase gazeuse couplée à la spectrométrie de masse (CPG/SM)
I.10. Solvants d’extraction des lipides
I.11. Techniques utilisés pour l’obtention et l’analyse des acides gras
II. Matériels et méthodes
II.1. Extraction de l’éponge
II.1.1. Matériel biologique
II.1.2. Solvants
II.1.3. Méthode
II.2. Analyse en CCM des différents extraits
II.2.1. Matériels
II.2.2. Méthode
II.3. Transestérification
II.3.1. Matériels
II.3.2. Méthode
II.4. Analyse par chromatographie en phase gazeuse couplée à la masse des EMAG
III. Résultats et discussions
III.1. Extraction de l’éponge
III.2. Analyse en CCM des différents extraits
III.3. Analyse en CPG/SM
CONCLUSION
CONCLUSION GENERALE
PERSPECTIVES
RÉFÉRENCES PARTIE I
RÉFÉRENCES PARTIE II
ANNEXE I
ANNEXE II
ANNEXE III
ANNEXE IV
ANNEXE V
ANNEXE VI