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SEPARATION DE LA FRACTION ACTIVE D’E.B/FTM PAR CHROMATOGRAPHIE :
Recherche du solvant de migration :
La première étape d’une chromatographie sur colonne est la recherche de solvant de migration. Ainsi, des chromatographies sur couche mince ont été réalisées avec la fraction étudiée en utilisant de divers éluants et le gel de silice 60 F254(Merck) sur feuille plastique comme phase stationnaire. Les éluants utilisés ont été les suivants :
-Acétate d’éthyle/Méthanol/Eau (65/45/10)
-Butanol /Acide acétique/Eau (4/1/5)
-Dichlorométhane/Méthanol (80 /20)
Le solvant utilisé pour la chromatographie sur colonne sera celui qui sépare mieux le composé étudié.
Après la migration et la comparaison des différents chromatogrammes, le mélange Dichlorométhane/Méthanol (80 /20) a été choisi pour la chromatographie sur colonne.
Processus de la séparation :
La phase stationnaire utilisée est le Silicagel 60(Merck) de granulométrie 63 à 200 µm à raison de 50 g par gramme de la fraction à chromatographier.
D’après le résultat du test de relaxation de ces quatre fractions, la Fraction F.Met qui est la fraction active, a fait l’objet de processus de séparation par chromatographie sur une colonne de dimension 1,5cm x1, 5m. Cinq grammes de F.Met ont été chromatographiés sur une colonne de gel de silice en utilisant comme solvant de migration le mélange DCM /MeOH. L’élution a été effectuée selon un gradient de polarité, en faisant varier les proportions de solvant constituant de l’éluant de 80/20 à 0/100(v/v). Les différentes fractions recueillies dans des tubes à essais ont été analysées sur CCM avec comme système des solvants de migration le DCM /MéOH (80/20). Les fractions qui présentent le même profil chromatographique ont été rassemblées puis évaporées sous vide à 40°C (Figure 4).
SCREENING PHYTOCHIMIQUE DE LA FRACTION ACTIVE
En fonction des résultats des tests d’activité pharmacologique, la fraction F.Met6 a été sélectionnée pour l’étude phytochimique.
Des chromatographies sur couche mince ont été effectuées sur cette fraction pour identifier ses constituants (MAROUF A. ; 2002). Pour cela, la fraction a été chromatographiée sur gel de silice 60 F254(MERCK) sur feuille plastique et éluée par un mélange des solvants DCM/MéOH (80/20). Après migration, la plaque a été séchée à la température ambiante pendant quelques minutes. La plaque a été ensuite vaporisée de révélateur caractéristique de chaque famille chimique à identifier (Tableau I) puis examinée sous UV (DAVE O. ; 2003).
La présence de famille chimique a été caractérisée par l’apparition de fluorescence ou de coloration intense de taches.
Les signes + et – ont été utilisés pour évaluer respectivement la présence ou l’absence d’une famille chimique.
Les réactifs utilisés pour le screening phytochimique sont représentés sur le Tableau I ci-après.
ETUDE PHARMACOLOGIQUE :
TEST IN VIVO :
Ce test avait pour objectif de mettre en évidence l’activité des extraits E.B/FTM sur le bronchospasme provoqué à l’histamine exogène chez les cobayes (PERRY et BOYD, 1941 ; LABARRE et PLISNIER ,1959).
Préparation de l’extrait :
L’Extrait Brut E.B /FTM a été dissout dans un mélange éthanol-eau (5/95).
Administration de l’extrait :
Quatre lots de 4 cobayes ont été utilisés .Le premier lot n’a reçu que de l’éthanol 5%, les trois autres lots ont été traités avec 5 , 10 et 15mg/kg d’ E.B/FTM . Ce traitement a été répété pendant trois jours par voie orale et le test de bronchospasme a été effectué 2h après la dernière administration (RAOELISON G.E. ,1998). Le volume administré a été de 1ml/Kg/jour.
Préparation de l’animal et dispositif expérimental pour le test de bronchospasme :
Le cobaye a été anesthésié avec de la Kétamine® à raison de 80mg/kg par voie intramusculaire. Après 15 à 30 minutes, l’animal a été fixé sur une plaque chauffante pour maintenir sa température à 37°C. Une incision musculaire qui suit celle réalisée au niveau cutanée a été effectuée au niveau du cou de l’animal afin de dégager la trachée. Cette dernière a été cathéterisée. La canule trachéale est reliée d’une part à une pompe de starling pour assurer la respiration avec fréquence et débit constants et d’autre part à un transducteur qui est en relation avec l’enregistreur de réponse biologique. Puis la veine jugulaire a été canulée pour l’administration des produits.
Le Pancuronium®, un curarisant, à la concentration de 2mg/ml, à raison de 0,005ml/100g de poids corporel de l’animal a été administré par voie intraveineuse pour bloquer la respiration spontanée de cobaye (BRUGUEROLLE et coll., 1977).
Technique d’enregistrement :
Après 15 minutes d’adaptation de l’animal dans les conditions expérimentales, l’Histamine à 10µg /kg a été injecté au niveau de la veine jugulaire suivie de sérum physiologique.
Le volume d’air envoyé par la pompe excède les besoins respiratoires normaux du cobaye, cet excès d’air a été enregistré (PERRY et BOYD, 1941 ; LABARRE et PLISNIER ,1959).
L’activité d’E.B/FTM sur le bronchospasme a été exprimée en pourcentage d’inhibition par rapport au spasme provoqué à l’Histamine seule chez le lot témoin.
Le paramètre mesuré est la DI50 qui est la dose inhibant de 50% l’effet de l’histamine.
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Table des matières
INTRODUCTION
MATERIELS ET METHODES
A. Matériel végétal
B. Animaux d’expérience
C. Etude chimique
1. Extraction de FTM
2. Fractionnement d’E.B/FTM
3. Séparation chromatographique de la fraction active d’E.B/FTM
4. Screening phytochimique
D. Etude pharmacologique
1. Test pharmacologique in vivo d’E.B /FTM
1.1) Préparation de l’extrait à tester
1.2) Administration de l’extrait
1.3) Préparation de l’animal et dispositif expérimental pour le test de bronchospasme
1.4) Technique d’enregistrement
2. Test pharmacologique in vitro d’E.B/FTM
2.1) Préparation de l’extrait à tester
2.2) Préparation de la solution de survie
2.3) Préparation de l’organe
2.4) Dispositif expérimental
2.5) Technique d’enregistrement
2.6) Activité d’E.B/FTM sur la trachée isolée de cobaye précontractée à l’Histamine
2.7) Effet d’E.B/FTM vis-à-vis de l’activité contractile de l’Histamine
2.8) Recherche de la fraction active d’E.B/FTM
2.9) Recherche de la fraction active de F.Met
I ?2.10) Analyse de l’effet de F.Met.
a) Effet du Propranolol sur l’activité de F.Met6
b) Effet combiné avec la Théophylline
3. Produits utilisés
4. Analyse statistique et expression des données
E. Test de toxicité aigue
RESULTATS
I. RESULTATS CHIMIQUES
I.1 Rendement d’extraction de FTM
I.2 Rendements des différents fractionnements d’E.B/FTM
I.3 Rendements de la séparation chromatographique de F.Met
I.4 Constituants chimiques de la fraction F.Met6
II. RESULTATS PHARMACOLOGIQUES
II.1 Effet spasmolytique de l’extrait brut E.B/FTM
II.2 Activité bronchorelaxante d’E.B/FTM
II.3 Effet inhibiteur d’E.B/FTM sur l’activité de l’Histamine
II.4 Effet relaxant des différentes fractions d’E.B/FTM
II.5 Activité relaxante des différentes fractions de F.Met
II.6 Interaction entre F.Met6 et récepteurs ß2adrénergiques
II.7 Effets combinés de F.Met6 et de la Théophylline
III. TOXICITE D’E.B/FTM
DISCUSSION
CONCLUSION
ANNEXE
Références bibliographiques
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