Maturation folliculaire et cycle ovulatoire chez la chatte

 Maturation folliculaire et cycle ovulatoire chez la chatte

Les différentes phases du cycle anovulatoire

Il existe très peu de modifications de l’appareil génital externe au cours du cycle. La distinction entre les différentes phases du cycle repose donc uniquement sur des modifications comportementales (28).
 Le pro- œstrus
Le pro-oestrus est défini comme la période du cycle où les mâles sont attirés par des femelles non réceptives (26). Pendant le pro-oestrus, la chatte montre une diminution générale de son activité. Elle miaule plus souvent et présente plusieurs séquences comportementales types : elle piétine sur ses membres postérieurs, elle se roule sur le sol, se frotte aux objets. Elle est généralement plus câline avec son propriétaire et de moins en moins agressive avec les mâles qui lui font des avances. Elle accepte alors le chevauchement mais refuse l’intromission. Le pro-oestrus dure en moyenne un à deux jours avec des extrêmes allant de 12 heures à 3 jours (13) toutefois, cette phase n’est pas observée régulièrement (26).
 L’œstrus
L’œstrus chez la chatte est caractérisé par l’acceptation du chevauchement et du coït. La chatte vocalise d’avantage. On note parfois un écoulement blanchâtre aux lèvres de la vulve. La durée de cette phase est variable. Sa valeur moyenne est située entre 6 et 10 jours avec des extrêmes
allant de 12 heures à 19 jours. Cette variation s’explique là encore par des différences raciales (oestrus plus long pour les chats de type oriental, plus courts pour les chats de type persan). On peut noter également que la succession de plusieurs oestrus consécutifs non séparés par des phases de repos peut expliquer des périodes oestrales longues (19 jours).
Le rôle de la saillie sur la durée de l’œstrus est controversé. Pour certains, elle entraînerait son arrêt dans les 24 à 48 heures, pour d’autres auteurs, il faut attendre 4 à 5 jours pour que cesse le comportement d’œstrus (13).
 Le post-oestrus
De nombreux auteurs ne distinguent pas l’étape du post-oestrus. Il est caractérisé par un comportement identique à celui du pro-oestrus mais suivant immédiatement l’oestrus. La femelle accepte le chevauchement mais refuse de nouveau l’intromission. La durée de cette phase est de 24 à 72 heures .
 L’inter-oestrus
L’inter-oestrus est la période de repos sexuel séparant 2 phases d’oestrus (26). Il dure en moyenne 2 semaines avec un minimum de 3 jours et un maximum de 30 jours (60). Là encore, il existe des variations raciales sur la durée de l’inter-oestrus (long chez les chattes de type persan, court chez les chattes de type oriental) (8). Durant cette période, la chatte ne vocalise plus et n’attire plus les mâles. Elle retrouve un comportement « normal ».
 L’anoestrus
L’anoestrus est la période de repos sexuel entre deux saisons sexuelles . Sous nos latitudes, cette période dure en moyenne trois mois, d’octobre à fin décembre. Elle est plus longue pour les Persans que pour les Orientaux. La chatte n’exprime aucun comportement sexuel et il est très difficile de la différencier d’une chatte ovariectomisée .

Table des matières

ABREVIATIONS
INDEX DES FIGURES
INDEX DES TABLEAUX
INDEX DES PHOTOS
1. ETUDE BIBLIOGRAPHIQUE
1.1. CYCLICITE ET OVULATION CHEZ LA CHATTE
1.1.1. Rappels d’anatomie
1.1.1.1. Les ovaires
1.1.1.2. Les oviductes
1.1.1.3. L’utérus
1.1.1.4. Le vagin et le vestibul
1.1.1.5. La vulve et le clitoris
1.1.2. Rappels de physiologie
1.1.2.1. Caractéristiques générales du cycle oestral et cycle anovulatoire
1.1.2.1.1. Variabilité du cycle
1.1.2.1.2. Les différentes phases du cycle anovulatoire
1.1.2.2. Maturation folliculaire et cycle ovulatoire chez la chatte
1.1.2.2.1. Maturation folliculaire
1.1.2.2.2. Les différentes phases du cycle ovulatoire
1.1.2.3. Modifications hormonales survenant au cours du cycle
1.1.2.3.1. Les hormones hypophysaires
1.1.2.3.2. Les hormones stéroïdiennes
1.1.3. Les différentes méthodes de suivi de l’œstrus chez la chatte
1.1.3.1. Méthodes cliniques
1.1.3.1.1. Comportement
1.1.3.1.2. Mise en présence d’un mâle
1.1.3.2. Méthodes paracliniques
1.1.3.2.1. Frottis vaginaux
1.1.3.2.2. Echographie ovarienne
1.1.4. Déclenchement de l’ovulation
1.1.4.1. Utilisation de mâle vasectomisé
1.1.4.2. Stimulation mécanique des récepteurs vaginaux
1.1.4.3. Déclenchement hormonal
1.1.4.3.1. Traitement à base de hCG
1.1.4.3.2. Traitement à base de GnRH
1.1.5. Détermination du moment de l’ovulation
1.1.5.1. Par dosage hormonaux
1.1.5.1.1. Dosage de la LH
1.1.5.1.2. Dosage de la progestérone
1.1.5.2. Détermination de l’ovulation par examen direct des ovaires
1.1.5.3. Utilisation de l’échographie pour le suivi de l’ovulation dans d’autres espèces
1.2. RECOLTE ET EXAMEN DU SPERME CHEZ LE CHAT
1.2.1. Rappels d’anatomie
1.2.1.1. Testicules, enveloppes testiculaires, épididymes et conduits déférents
1.2.1.2. Urètre
1.2.1.3. Glandes annexes
1.2.1.4. Pénis
1.2.1.5. Innervation
1.2.2. Rappels de physiologie
1.2.2.1. Erection
1.2.2.1.1. Mécanisme
1.2.2.1.2. Déterminisme
1.2.2.2. Ejaculation
1.2.2.2.1. Mécanisme
1.2.2.2.2. Déterminisme
1.2.2.3. Puberté et saison sexuelle
1.2.3. Techniques de récolte de la semence
1.2.3.1. Vagin artificiel .
1.2.3.2. Electroéjaculation
1.2.3.2.1. Anesthésie
1.2.3.2.2. Techniques de prélèvement
1.2.3.2.3. Ejaculation rétrograde
1.2.3.3. Dissection de l’épididyme
1.2.4. Analyse de la semence
1.2.4.1. Etude macroscopique : volume et couleur de la semence
1.2.4.2. Caractères physico-chimiques de la semence
1.2.4.3. Etude microscopique
1.2.4.3.1. Mobilité
1.2.4.3.2. Nombre de spermatozoïdes
1.2.4.3.3. Vitalité des spermatozoïdes
1.2.4.3.4. Morphologie des spermatozoïdes
1.2.4.3.5. Anomalies : le spermocytogramme
1.2.4.4. Tests fonctionnels
1.2.4.4.1. Intégrité de l’acrosome
1.2.4.4.2. Condensation de la chromatine
1.2.4.4.3. Hemizona test
1.2.4.4.4. Pénétration de la zone pellucide
1.2.4.4.5. Fécondation in vitro
1.2.4.5. Anomalies de la semence
1.3. TECHNIQUES D’INSEMINATION ARTIFICIELLE CHEZ LA CHATTE
1.3.1. Insémination artificielle intra-vaginale chez la chatte
1.3.1.1. Déclenchement de l’ovulation
1.3.1.2. Matériel utilisé
1.3.1.3. Lieu d’insémination
1.3.1.4. Doses inséminantes
1.3.1.5. Résultats
1.3.2. Insémination artificielle intra-utérine chez la chatte
1.3.2.1. Voies d’abord
1.3.2.1.1. Par cathétérisation du col utérin
1.3.2.1.2. Par laparotomie
1.3.2.1.3. Par laparoscopie
1.3.2.2. Déclenchement de l’ovulation
1.3.2.3. Doses inséminantes
1.3.2.4. Résultats
1.3.3. Insémination artificielle dans les trompes utérines
1.3.3.1. Déclenchement de l’ovulation
1.3.3.2. Matériel et méthode
1.3.3.3. Doses inséminantes
1.3.3.4. Résultats
2. ETUDE EXPERIMENTALE
2.1. MATERIELS ET METHODES
2.1.1. Les animaux
2.1.1.1. La sélection et les critères d’inclusion des animaux
2.1.1.1.1. Les chattes
2.1.1.1.2. Les mâles
2.1.1.1.3. Critères d’inclusions
2.1.1.2. La maintenance des animaux
2.1.1.3. Détection des chaleurs
2.1.2. Suivi échographique de la maturation folliculaire
2.1.2.1. Préparation de la séance d’échographie
2.1.2.1.1. Réglage de l’échographe
2.1.2.1.2. Préparation de l’animal
2.1.2.2. Suivi échographique des follicules
2.1.2.2.1. Critères de choix pour définir l’aspect échographique d’un follicule
2.1.2.2.2. Mesure du diamètre des follicules ovariens
2.1.3. Déclenchement de l’ovulation
2.1.4. Prélèvements de la semence
2.1.5. Examen de la qualité de la semence
2.1.6. Insémination artificielle intra-vaginale
2.1.7. Contrôle échographique de l’ovulation
2.1.8. Dosages hormonaux
2.1.9. Diagnostic de gestation
2.1.10. Comptage des chatons à la naissance
2.2. RESULTATS
2.2.1. Résultats par chatte
2.2.1.1. Cycle n°1 : Aby
2.2.1.2. Cycle n°2 : Happy
2.2.1.3. Cycle n°3 : Beth
2.2.1.4. Cycle n°4 : Sissi
2.2.1.5. Cycle n°5 : Aby, 2ème cycle
2.2.1.6. Cycle n°6 : Yseult
2.2.1.7. Cycle n°7 : Beth, 2ème cycle
2.2.1.8. Cycle n°8 : Aby, 3ème cycle
2.2.1.9. Cycle n°9 : Chagasse
2.2.1.10. Cycle n°10 : Noumène, 1er cycle
2.2.1.11. Cycle n°11 : Noumène, 2ème cycle
2.2.1.12. Cycle n°12 : Pussy
2.2.2. Synthèse des résultats
2.2.2.1. Suivi de la maturation folliculaire
2.2.2.1.1. Maturation folliculaire
2.2.2.1.2. Jours de déclenchement de l’ovulation
2.2.2.2. Déclenchement de l’ovulation
2.2.2.2.1. Appréciation de la réponse post-coïtale
Ovulation
2.2.2.3. Caractéristiques de la semence récoltée
2.2.2.4. Insémination artificielle
2.2.2.4.1. Heure d’insémination
2.2.2.4.2. Lieu d’insémination
2.2.2.4.3. Nombre de spermatozoïdes inséminés
2.2.2.4.4. Taux de gestation
2.2.2.4.5. Nombre de petits par porté
2.2.2.4.6. Sex ratio
2.2.3. Discussion
2.2.3.1. Intérêt du suivi des chaleurs et de la maturation folliculaire
2.2.3.2. Intérêt du déclenchement de l’ovulation par stimulation mécanique
2.2.3.3. Suivi échographique de l’ovulation
2.2.3.4. Qualité de la semence inséminée et fertilité obtenue
2.2.3.5. Lieu de dépôt de la semence
2.2.3.6. Moment de réalisation de l’insémination
2.2.3.7. Efficacité de la technique d’insémination artificielle utilisée
2.2.3.8. Nombre de petits par portée obtenu avec cette méthode
2.2.3.9. Perspectives
CONCLUSION
BIBLIOGRAPHIE

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