LES PARAMPHISTOMOSES GASTRODUODENALES BOVINES
Appareil excrรฉteur
Structure
Peu dโรฉtudes ont รฉtรฉ faites sur la structure de lโappareil excrรฉteur des espรจces du genre Paramphistomum. POLJAKOVA-KRUSTEVA & al. (1975) se sont intรฉressรฉs au systรจme excrรฉteur de Paramphistomum microbothrium mais il semblerait que ces auteurs lโaient confondu avec les cรฆca intestinaux (MATTISON, HANNA & NIZAMI, 1992 a). A notre connaissance, seul le systรจme excrรฉteur des juvรฉniles de Paramphistomum epiclitum a รฉtรฉ รฉtudiรฉ par MATTISON, HANNA & NIZAMI (1992 a). Nous nous rรฉfรฉrerons donc aux travaux de ces auteurs pour la description de cet appareil.Le systรจme protonรฉphridien est composรฉ de canaux disposรฉs symรฉtriquement de chaque cรดtรฉ du corps. Ils relient les vaisseaux effรฉrents issus de cellules flammes individuelles ร une vessie (Figure 16). De cette vessie part un canal terminal qui sโouvre ร lโextรฉrieur par un petit nรฉphridiopore situรฉ ร la face postรฉro-dorsale du corps. Chaque cellule flamme porte un cรดne dโenviron 100 flagelles. Des extensions cytoplasmiques de chaque cellule flamme sโassemblent avec la premiรจre cellule effรฉrente correspondante. Ces extensions sont reliรฉes par des ponts filamenteux. Des extensions cytoplasmiques des cellules effรฉrentes, reliรฉes par des desmosomes striรฉs, dรฉlimitent une lumiรจre. La disposition en colonne des cellules effรฉrentes forme ainsi le vaisseau effรฉrent. Trois types de canaux se distinguent morphologiquement et sont nommรฉs canaux primaires, secondaires et tertiaires. Les canaux primaires relient les vaisseaux effรฉrents aux canaux secondaires. Leur membrane luminale sโรฉlรจve en courts tubercules. Les canaux secondaires ou ascendants sโรฉtendent depuis la rรฉgion acรฉtabulaire jusquโau pharynx oรน ils fusionnent avec les canaux tertiaires. Leur surface luminale prรฉsente de nombreuses lamelles. Chez les formes immatures, des groupes de cils se projettent dans la lumiรจre. Ces cils disparaissent au stade adulte. Les canaux tertiaires ou descendants courent le long du corps pour se terminer postรฉrieurement au niveau de la vessie. Ils sont reliรฉs dans la moitiรฉ du corps par un canal transverse, ce qui leur confรจre une disposition en H. Ils sont tapissรฉs dโun syncytium dont la membrane apicale sโรฉlรจve en de nombreuses lamelles. La membrane basale prรฉsente des replis. Le cytoplasme se caractรฉrise par la prรฉsence de mitochondries et la protrusion dโextensions parenchymateuses. Des gouttelettes lipidiques sโaccumulent progressivement dans lumiรจre des canaux tertiaires. Leur excrรฉtion est plus importante chez les formes immatures que chez les adultes. La vessie est tapissรฉe par un syncytium ressemblant ร celui des canaux tertiaires. Ce syncytium vรฉsical sโinterrompt au niveau dโun complexe jonctionnel formรฉ avec le canal terminal. Ce dernier est tapissรฉ par le syncytium tรฉgumentaire qui contient des corps dโinclusion et porte des crรชtes semblables ร celles observรฉes dans le pharynx. Cependant, il se diffรฉrencie de celui-ci par lโabsence de papilles sensorielles.
Fonctions
Les cellules flammes accompliraient un rรดle dans lโultrafiltration : les ondulations des flagelles crรฉeraient un gradient de pression hydrostatique entre la lumiรจre protonรฉphridienne et les tissus environnants. Ce gradient induirait un afflux de fluide intercellulaire permettant lโextraction des dรฉchets mรฉtaboliques (Figure 17). La filtration aurait lieu au niveau des ponts filamenteux reliant les extensions cytoplasmiques des cellules flammes et effรฉrentes. Les cils des canaux secondaires des formes immatures aideraient les mouvements du fluide rendus difficiles par les forces frottements. Ces cils sont absents des canaux secondaires chez les adultes dont la largeur plus importante rรฉduirait les frottements. Les lamelles rencontrรฉes au niveau des canaux secondaires et tertiaires ainsi que dans la vessie faciliteraient la rรฉabsorption de fluide et de nutriments. Ceci est en accord avec la prรฉsence de phosphatases acides et alcalines, enzymes qui, selon THREADGOLD (1968) et DIKE & READ (1971) (citรฉs par MATTISON, HANNA & NIZAMI, 1992 a), seraient impliquรฉes dans lโassimilation des monosaccharides. Les replis de la membrane basale seraient responsables du transport hydrique.
Guide du mรฉmoire de fin d’รฉtudes avec la catรฉgorie ย Prรฉsentation des paramphistomes |
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Table des matiรจres
INTRODUCTION
PREMIERE PARTIE : GENERALITES SUR LES PARAMPHISTOMOSES GASTRODUODENALES BOVINES
I. Prรฉsentation des paramphistomes
I .1. Position taxinomique et classification simplifiรฉe
I.1.1. Position taxinomique de genre
I.1.2. Classification systรฉmatique
I.2. Aspect morphologique et anatomie
I.2.1. Adultes
I.2.1.1. Morphologie
I.2.1.2 Acรฉtabulum
I.2.1.3. Tรฉgument
I.2.1.4. Cellules neurosรฉcrรฉtrices
I.2.1.5. Appareil digestif
I.2.1.6. Appareil excrรฉteur
I.2.1.7. Appareil circulatoire et parenchyme
I.2.1.8. Appareil reproducteur
I.2.2. ลufs
I .2.3. Formes larvaires
I.2.3.1. Miracidium
I.2.3.2. Sporocyste
I.2.3.3. Rรฉdie
I.2.3.4. Cercaire
I.2.3.5. Mรฉtacercaire
I.3. Biologie
I.3.1. Cycle รฉvolutif
I.3.1.1. Etapes du cycle
I.3.1.2. Elรฉments conditionnant le cycle
I.3.1.3. Hรดtes intermรฉdiaires
I.3.1.4. Hรดtes dรฉfinitifs
I.3.2. Habitat et nutrition
I.4. Pouvoir pathogรจne
I.4.1. Des formes immatures
I.4.2. Des formes matures
I.5. Pouvoir antigรจne, allergรจne et immunogรจne
I.5.1. Pouvoir antigรจne
I.5.2. Pouvoir allergรจne
I.5.3. Pouvoir immunogรจne
I.5.3.1. Mรฉcanismes immunitaires
I.5.3.2. Mรฉcanismes dโรฉchappement
I.5.3.3. Immunitรฉ de prรฉmunition et immunitรฉ vaccinale
II. Epidรฉmiologie des paramphistomoses gastroduodรฉnales bovines
II.1. Epidรฉmiologie descriptive
II.1.1. Caractรฉristiques des populations atteintes
II.1.2. Rรฉpartition gรฉographique
II.1.2.1. Rรฉpartition dans le monde
II.1.2.2. Rรฉpartition en France
II .1.3. Rรฉpartition dans le temps
II.1.4. Importance รฉconomique
II.2. Epidรฉmiologie analytique
II.2.1. Sources de lโinfestation
II.2.2. Rรฉsistance du parasite
II.2.3. Mode de contamination
II.2.4 Facteurs de risques
II.3. Epidรฉmiologie synthรฉtique
III. Etude anatomo-clinique des paramphistomoses gastroduodรฉnales bovines
III.1. Pathogรฉnie
III. 2. Clinique
III.2.1. Phase prรฉ-imaginale
III.2.1.1. Symptรดmes
III.2.1.2. Signes biologiques
III.2.2. Phase imaginale
III.2.2.1. Symptรดmes
III.2.2.2. Signes biologiques
III.3. Lรฉsions
III.3.1. Phase prรฉ-imaginale
III.3.1.1. Lรฉsions macroscopiques
III.3.1.2. Lรฉsions microscopiques
III.3.2. Phase imaginale
III.3.2.1. Lรฉsions macroscopiques
III.3.2.2. Lรฉsions microscopiques
IV. Diagnostic des paramphistomoses gastroduodรฉnales bovines
IV.1. Diagnostic clinique
IV.1.1. Diagnostic positif
IV.1.2. Diagnostic diffรฉrentiel
IV.2. Diagnostic nรฉcropsique
IV.3. Diagnostic expรฉrimental
IV.3.1 Diagnostic coproscopique
IV.3.2. Diagnostic immunologique
IV.3.2.1. Intra-dermo rรฉaction
IV.3.2.2. Fixation du complรฉment
IV.3.2.3. Immuno-prรฉcipitation
IV.3.2.4. Immunofluorescence indirecte
IV.3.2.5. Enzyme Linked Immunosorbent Assay
V. Pronostic des paramphistomoses gastroduodรฉnales bovines et mรฉthodes de lutte
V.1. Pronostic
V.2 Traitement
V.2.1. Antiparasitaires utilisables
V.2.1.1. Dรฉrivรฉs du diphรฉnyl sulfure
V.2.1.2. Dรฉrivรฉs du rรฉsorcinol
V.2.1.3. Dรฉrivรฉs de la salicylanilide
V.2.1.4. Divers
V.2.2. Modalitรฉs du traitement
V.3. Prophylaxie
V.3.1. Mesures dรฉfensives
V.3.2. Mesures offensives
DEUXIEME PARTIE : ENQUETE EPIDEMIOLOGIQUE EN CHAMPAGNE-ARDENNE
I. Matรฉriels et mรฉthodes
I.1. Echantillonnage
I.1.1. Population cible
I.1.2. Abattoirs
I.1.3. Taille de lโรฉchantillon
I.1.4. Sรฉlection des animaux
I.2. Rรฉcolte des donnรฉes
I.2.1. Examen des prรฉ-estomacs
I.2.2. Donnรฉes concernant les animaux de lโรฉchantillon
I.2.3. Donnรฉes concernant les cheptels รฉleveurs des animaux de lโรฉchantillon
I.3. Variables รฉtudiรฉes
I.4. Gestion des donnรฉes
I.5. Traitements et analyses statistiques
II. Rรฉsultats
II.1. Caractรฉristiques de lโรฉchantillon
II.2. Prรฉvalence de lโinfestation par les paramphistomes
II.3. Facteurs de variabilitรฉ
III. Discussion
III.1. Echantillonnage
III.2. Importance des paramphistomoses gastroduodรฉnales bovines
III.3. Facteurs de variabilitรฉ
TROISIEME PARTIE : MISE AU POINT DโUN TEST E.L.I.S.A. POUR LA DETECTION DE COPROANTIGENES DE PARAMPHISTOMES
I. Principe du test E.L.I.S.A. pour la dรฉtection de coproantigรจnes parasitaires
I.1. Principe du test
I.2. Intรฉrรชts
I.2.1. Avantages par rapport aux autres tests de dรฉpistage
I.3.2. Succรจs du test dans le dรฉpistage dโautres parasitoses digestives
II. Matรฉriels et mรฉthodes
II.1. Obtention du matรฉriel
II.1.1. Prรฉlรจvements des fรจces
II.1.2. Obtention dโantigรจnes dโexcrรฉtion-sรฉcrรฉtion
II.1.3. Dosage de la solution antigรฉnique
II.1.4. Obtention dโanticorps anti-antigรจnes dโexcrรฉtion-sรฉcrรฉtion (Ac anti-Ag E/S) de paramphistomes
II.1.3. Prรฉparation des coproantigรจnes
II.2. Examens coproscopiques
II.2.3. Technique (Figure 45)
II.2.4. Interprรฉtation
II.3. Mise au point du test E.L.I.S.A
II.3.1. Technique gรฉnรฉrale (Figure 46)
II.3.2. Dรฉtermination des paramรจtres techniques du test
II.4. Traitement et analyse statistique
III. Rรฉsultats
III.1. Evaluation des examens coproscopiques
III.1.1. Concordance avec lโexamen nรฉcropsique, sensibilitรฉ et spรฉcificitรฉ
III.1.2. Relation entre le nombre dโลufs par grammes de fรจces et le niveau dโinfestation
III.2. Mise au point du test E.L.I.S.A
III.3. Identification de lโespรจce de paramphistomes
IV. Discussion
IV.1. Test E.L.I.S.A. pour la dรฉtection de coproantigรจnes de paramphistomes
IV.1.1. Nature du prรฉlรจvement biologique testรฉ
IV.1.2. Variante de la technique E.L.I.S.A. utilisรฉe
IV.1.3. Divergence entre Ag E/S expรฉrimentaux et naturels
IV.2. Examen coproscopique
DISCUSSION GENERALE
CONCLUSION
BIBLIOGRAPHIE
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