LA CHLAMYDIOSE ABORTIVE OVINE

LA CHLAMYDIOSE ABORTIVE OVINE

CONTROLE DE L’INFECTION

Mesures sanitaires

Comme nous l’avons vu plus haut, les matières infectieuses sont principalement les annexes fœtales, l’avorton, les sécrétions utérines ou vaginales et le lait. La maîtrise de la propagation de l’infection au sein du troupeau passe donc par la protection des brebis naïves vis-à-vis de ces matrices. Il faudrait donc, idéalement, isoler du reste du troupeau toute brebis ayant avorté ou ayant donné naissance à des agneaux chétifs ainsi que retirer placenta, avorton et litière souillée de l’enclos. L’élimination stricte est recommandée car les carnivores domestiques (ou sauvages) peuvent participer à la dissémination des matières infectieuses en les déplaçant. Une désinfection des murs et des enclos serait aussi recommandée pour limiter la propagation aux brebis agnelant par la suite (Longbottom et Coulter, 2003). Le port de gants pour aider une brebis à agneler ou pour manipuler du matériel infectieux et un nettoyage des mains avant toute intervention sur une autre brebis est également essentiel.
En cas d’introduction d’animaux provenant d’un autre élevage, il serait intéressant de connaître le statut de l’élevage d’origine vis-à-vis de la chlamydiose, pour le comparer à celui de l’élevage acheteur et évaluer si les deux statuts sont compatibles, étant donné qu’une brebis infectée peut excréter des bactéries pendant 2 à 3 ans. Si le statut du troupeau d’origine est inconnu, l’introduction est à éviter (Laroucau et al., 2014)

Vaccination

Comme nous l’avons évoqué précédemment, dans les conditions naturelles, une infection par C. abortus entraîne la mise en place d’une immunité suffisante pour qu’un nouvel avortement ne puisse avoir lieu pendant la durée de vie économique habituelle des brebis d’élevage (5 à 6 ans en moyenne). C’est pour cette raison que la vaccination semble une bonne méthode de maîtrise des avortements à C. abortus (Rodolakis et Laroucau, 2015). Dans un premier temps, un vaccin inactivé a été mis au point en 1951 par M. McEwen et M. Foggie. Il a été mis en circulation en France sous le nom de Chlamyvax FQND avec une protection conjointe contre la fièvre Q. Cependant, ce vaccin n’entraîne pas de protection efficace contre le portage et l’excrétion de C. abortus et ne permet pas de prévenir tous les avortements (des vagues d’avortements ont été observées dans des troupeaux correctement vaccinés) (Chalmers et al., 1997; Menzies, 2012). En 1979, une souche mutante de C. abortus thermosensible a été mise au point et a permis le développement d’un vaccin vivant qui protège efficacement les brebis contre l’infection. Cette souche a été obtenue par mutagenèse à la nitrosoguanidine de la souche de référence AB7. La souche mutante vaccinale thermosensible 1B se multiplie normalement de 35 à 38°C (température permissive) sur culture de cellules McCoy mais cent fois moins que la souche sauvage AB7 à 39,5°C (température restrictive) ce qui correspond à la température corporelle des brebis (Rodolakis, 1983).L’innocuité et l’immunogénicité de cette souche mutante thermosensible en tant que vaccin a été étudiée pour permettre sa commercialisation. Les résultats de reproduction de souris inoculées avec différentes souches de C. abortus à 11 jours de gestation, et vaccinées deux mois auparavant avec la souche mutante 1B, sont similaires à ceux obtenus avec des souris non inoculées (autour de 11-12 souriceaux vivants par portée, le jour du part et 8 jours plus tard). Ces mêmes résultats sont significativement différents de ceux obtenus avec des souris inoculées sans avoir été vaccinées (moins de 2 souriceaux par portée). Des expériences similaires effectuées sur des milliers de brebis ont démontré l’absence d’excrétion, de transmission in utero et de pathogénicité de la souche 1B après vaccination, les résultats de reproduction des brebis vaccinées étant identiques à ceux de brebis témoins non vaccinées. L’infection de brebis préalablement vaccinées contre C. abortus n’a pas écourté leur gestation et n’a pas entraîné d’excrétion de bactéries à la mise bas ; a contrario, l’infection de brebis non vaccinées a induit des avortements (Rodolakis, 1983; Rodolakis et Souriau, 1983; Chalmers et al., 1997; Rodolakis et al., 1998; Rodolakis et Laroucau, 2015).De plus, une étude menée par Gerber a montré que la réponse en anticorps induite par la vaccination était la même que celle induite par une infection naturelle par C. abortus (Gerber et al., 2007). De ce fait, le titre en anticorps ne permet pas de différencier les individus vaccinés des individus malades.

Le vaccin contenant la souche 1B thermosensible a été commercialisé en France dès 1996 sous le nom de Tecvax ChlamydiaND, ensuite renommé CEVAC ChlamydiaND (première obtention d’AMM en décembre 1996 en France). On retrouve la même souche dans le vaccin Ovilis ChlamydiaND (AMM en mars 2003 en France). Ce sont les deux seuls vaccins de ce type disponibles en France. La vaccination des brebis avec ce vaccin vivant induit une protection aussi forte que celle induite par une primo-infection. Les animaux vaccinés sont efficacement protégés au moins trois ans et on prévient ainsi les avortements et l’excrétion de C. abortus chez les animaux vaccinés initialement naïfs (Rodolakis et Souriau, 1983). Ce vaccin est également efficace vis-à-vis des souches de C. pecorum (Rekiki et al., 2004). Cependant, il ne modifie pas l’évolution de la maladie pour les brebis déjà infectées au moment de la vaccination. Ces dernières peuvent donc avorter ou mettre bas des agneaux vivants infectés, pouvant avorter à leur tour. La vaccination des femelles ayant avorté ou déjà infectées est donc inutile.Le protocole vaccinal conseillé consiste à vacciner tout le cheptel la première année puis seulement les agnelles de renouvellement les années suivantes. Pour un taux de renouvellement de 20%, le cheptel est donc protégé au bout de 5 ans environ. Une autre stratégie consiste à ne vacciner que les agnelles mais on rallonge alors la durée nécessaire à la couverture vaccinale totale du troupeau. Le premier schéma présente l’avantage de limiter l’excrétion par les brebis infectées latentes et la dissémination de l’infection parmi les brebis adultes encore naïves. La vaccination contre la chlamydiose avec un vaccin vivant est donc la seule solution à l’assainissement d’un cheptel infecté mais elle atteint ses limites tant qu’il subsiste des animaux infectés latents (Bouakane et al., 2005). Il est également important de prendre en compte les mâles dans le protocole de vaccination même si, comme évoqué plus haut, la transmission vénérienne n’a pas été clairement établie.Un rappel trois ans après la primo-vaccination est conseillé (Bouakane et al., 2005). Cependant, une épreuve virulente réalisée trois ans après la vaccination a montré que les brebis étaient toujours protégées. On estime donc que les rappels ne sont pas nécessaires pendant la durée de vie économique de l’animal (Rodolakis et al., 2013).

Table des matières

Table des tableaux
Table des figures
Liste des abréviations
Introduction
I. La chlamydiose
A. Etiologie
B. Epidémiologie
C. Pathogénie
D. Signes cliniques et lésions
E. Diagnostic
1. Sur les produits d’avortement
2. Sur le sérum maternel
3. Performance des tests
F. Traitement
G. Contrôle de l’infection
1. Mesures sanitaires
2. Vaccination
II. Etude des facteurs de risque d’une infection à C. abortus en contexte vaccinal et étude du typage des souches responsables des avortements 
A. Etude préalable
B. Matériel et méthodes
1. Prélèvement des échantillons
a) Protocole de prélèvement et d’analyse
b) Matériel nécessaire au prélèvement des échantillons
2. Analyses PCR et sérologiques
3. Enquête en élevage
4. Echantillonnage des élevages
a) Choix des élevages
b) Représentativité de l’échantillon
5. Tests statistiques utilisés
C. Résultats
1. Résultats des analyses de laboratoire
2. Exploitation des résultats de l’enquête
a) Caractéristiques des élevages
b) Relation entre taille des élevages et présence de C. abortus
c) Comparaison du nombre d’avortements par catégorie d’élevage
d) Analyse des protocoles de vaccination
e) Analyse des mesures sanitaires
f) Analyse des traitements antibiotiques réalisés
III. Discussion générale
Conclusion de la thèse
Bibliographie
Annexes

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