Risques zoonotiques
ย ย ย ย ย ย ย ย Lโincidence de Toxocara canis chez les carnivores doit รชtre prise en compte quand on sait quโil a une potentialitรฉ zoonotique, pouvant รชtre ร lโorigine de ยซ larva migrans viscerales ยป (VLM) avec hyperรฉosinophilie affectant plusieurs organes dโune part et dโautre part la ยซ larva migrans oculaireยป (OLM) affectant lโลil et le nerf optique. Dans les viscรจres, elles produisent des granulomes รฉosinophiles. Dans lโลil, elles sont ร lโorigine dโun granulome sous-rรฉtinien quโil convient de diffรฉrencier du rรฉtinoblastome [15]. Le portage dโลufs sur les poils des animaux est sans doute un facteur de risque potentiel et important de contamination, dโautant plus que les carnivores domestiques partagent parfois la maison et le lit avec leurs propriรฉtaires. La majoritรฉ des cas de toxocarose humaine reste nรฉanmoins asymptomatique [14]. Aussi, lโimportance de cet agent zoonotique serait-elle sous-estimรฉe. La toxocarose est rarement identifiรฉe en Afrique Occidentale.
Taenia spp.
ย ย ย ย ย ย ย ย ย Le genre Taenia regroupe plusieurs espรจces. Leur biologie รฉtant trรจs proche, nous dรฉcrivons ici un modรจle commun de cycle parasitaire, pathologie et diagnostic expรฉrimental. Les particularitรฉs propres ร chaque espรจce sont rรฉsumรฉes dans le tableau I. Les cestodes du genre Taenia sont des parasites de lโintestin grรชle du chien ou du chat sous leur forme adulte. La contamination se fait par prรฉdation dโun hรดte intermรฉdiaire. Lโhรดte intermรฉdiaire varie en fonction de lโespรจce de Taenia en cause. Le plus souvent, lโhรดte intermรฉdiaire est un mouton.
– T. pisiformis : HI : lapin, liรจvre, rongeur. Larve de type cysticerque sur le foie et le pรฉritoine.
– T. hydatigena : HI : de ruminants ou de porcins (plus rarement). Larve de type cysticerque hรฉpatopรฉritonรฉale. Elle est remplie de liquide qui nโest pas sous pression (on parle aussi de ยซ boule-dโeau ยป) et peut mesurer jusquโร plusieurs centimรจtres de diamรจtre. Elle contient un scolex invaginรฉ et parasite la cavitรฉ abdominale de son hรดte.
– T. multiceps ou Taenia coenurus : HI : Mouton. Larve de type cรฉnure dans le systรจme nerveux central, elle est responsable de la maladie de tournis chez celui-ci. Comme le cysticerque, le cรฉnure contient un liquide translucide sans pression [22]
Actions pathogรจnes des formes adultes
๏ Action spoliatrice : Les ascarides se nourrissent du chyme intestinal de leurs hรดtes. La spoliation sโeffectue principalement sur les glucides, les sels minรฉraux et les vitamines. Cette action reste trรจs limitรฉe pour les cestodes. Les ankylostomes et les trichures adultes exercent une spoliation sanguine importante. Ces parasites รฉtant hรฉmatophages.
๏ Action mรฉcanique et irritative
– Ascaride : Il exerce une action mรฉcanique ; traumatisme ร lโorigine dโune inflammation catarrhale de lโintestin grรชle, obstruction et perforation de ce dernier. Action importante due ร la grande taille des parasites, ร leur mobilitรฉ et ร leur nombre souvent รฉlevรฉ. La taille des vers adultes explique les dรฉchirures de lโintestin lors dโinfestation importante [25].
– Capillaria aerophila : Les adultes irritent les bronches et la trachรฉe provoquant une trachรฉo-bronchite.
– Ancylostomes : Il provoque une irritation du tube digestif et une entรฉropathie exsudative. Il exerce une action traumatique ; consรฉquence de leur cheminement ร travers les tissus.
– Trichures : action traumatique liรฉe ร la prรฉsence des parasites fixรฉs ร la paroi du gros intestin. Il en rรฉsulte une irritation suffisante pour entraรฎner une congestion des muqueuses, et un hyperperistaltisme qui peut favoriser les invaginations.
– Taenias : action mรฉcanique due au nombre et ร la taille des vers. La prรฉsence de nombreux vers de grande taille peut รชtre ร lโorigine dโocclusions intestinales. On peut noter une particularitรฉ pour Dipylidium caninum : ses anneaux se dรฉplacent dans lโintestin, forcent le sphincter anal et viennent parfois obstruer lโorifice des glandes anales, provoquant leur engorgement.
๏ Action antigรฉnique et immunitรฉ
– Ascaride, Ancylostomes : une action antigรฉnique peut entraรฎner des rรฉactions dโhypersensibilitรฉ chez lโhรดte qui entraรฎne le dรฉveloppement de rรฉactions allergiques locales.
– Taenias : absence dโimmunitรฉ acquise.
๏ Action toxique
– Ascaride : Action toxique en raison des substances protรฉolytiques prรฉsentes dans la cavitรฉ gรฉnรฉrale des vers. La mort simultanรฉe de nombreux adultes peut provoquer une toxรฉmie.
– Ancylostomes, trichures : secrรจtent des substances toxiques hรฉmolysantes et inhibant le fonctionnement des organes hรฉmatopoรฏรฉtiques, ร lโorigine de lโanรฉmie hรฉmolytique secondaire.
– Taenias : due aux produits de dรฉcomposition de nombreux segments dans le tube digestif.
๏ Action inoculatrice et favorisante des infections
– Trichures : Action bactรฉrifรจre et favorisant des infections [26].
– Ancylostomes : En pรฉnรฉtrant ร travers la peau, les larves entraรฎnent avec elles certains germes tels que des bactรฉries.
Mรฉthode de collecte et de conservation des fรจces
ย ย ย ย ย ย ย ย Nous avions choisi dโeffectuer les prรฉlรจvements de faรงon individuelle. Ils avaient รฉtรฉ rรฉalisรฉs au sein du cabinet vรฉtรฉrinaire MIZAMI. Les matiรจres fรฉcales examinรฉes sont prรฉlevรฉes :
๏ soit directement dans le rectum par une fouille rectale par lโauteur lui mรชme. Cette mรฉthode de prรฉlรจvement semble lโidรฉale afin dโรฉviter les contaminations secondaires par le milieu extรฉrieur.
๏ soit immรฉdiatement aprรจs lโรฉmission de selles [28] sur la table dโexamen ou ร mรชme le sol du cabinet si le chien dรฉfรจque pendant la consultation.
๏ soit rapportรฉes par le propriรฉtaire au cabinet quelques heures aprรจs leur รฉmission.
Dans ce dernier cas, il รฉtait fourni au propriรฉtaire tous les matรฉriels de prรฉlรจvements nรฉcessaires ร savoir : un flacon en plastique stรฉrile pour chaque chien dans lequel on avait ajoutรฉ de lโalcool ร 70ยฐ, des sachets plastiques aseptiques, des gants. Il importe de noter que dans toutes les rรฉcoltes au sol, on prend garde de ne pas prรฉlever les excrรฉments qui auraient รฉtรฉ en contact direct avec le sol.
Degrรฉ dโinfestation
ย ย ย ย ย ย ย ย ย Les rรฉsultats obtenus montrent que la quantitรฉ dโลufs par gramme pour les diffรฉrentes espรจces de parasites est รฉlevรฉe. Parmi les parasites observรฉs, la plus forte infestation est reprรฉsentรฉe par Toxocara canis avec 533 ยฑ 655,22 ลufs par gramme de fรจces. Pour le reste des parasites la moyenne des OPG se situe entre 100 ร 300 OPG ; Ancylostoma caninum (283 ยฑ 483, 69 OPG), Trichuris vulpis (260 ยฑ 429,51 OPG), Dipylidium caninum (200 ยฑ 385,74 OPG), Uncinaria stenocephala (146 ยฑ 291,39 OPG), Toxascaris leonina (105 ยฑ 255, 32 OPG), Capillaria aerophila (104 ยฑ 239,6 OPG), sauf pour Taenia spp. qui ont une intensitรฉ moyenne de 84 ยฑ 218,5 OPG. Les OPG moyens varient proportionnellement avec la prรฉvalence des espรจces rencontrรฉs. Plus la prรฉvalence est รฉlevรฉe, plus lโOPG moyen pour cette espรจce est รฉlevรฉe. Le degrรฉ dโinfestation des chiens dans notre รฉtude ne sโรฉloigne pas de celle effectuรฉe ร Kinshasa (Zaire) [86]. Mais les OPG observรฉs lors de son รฉtude sont largement supรฉrieurs aux nรดtres. Par exemple, la moyenne pour Ancylostoma spp. se situe ร 950 ลufs et Toxascaris leonina ร 150 ลufs. Une รฉtude rรฉalisรฉe par Oluyomi A et Sowemimo dans lโรฎle-Ife (Nigeria) montre que le niveau dโinfestation est bas ; la moyenne pour Toxocara canis est de 393,8 ยฑ 83,4 OPG, Ancylostoma spp. (101, 5 ยฑ 32,8 OPG), Trichuris vulpis (3,4 ยฑ 1,5 OPG), Dipylidium caninum (2,2 ยฑ 0,8 OPG), Uncinaria stenocephala (0,2 ยฑ 0,2 OPG), Toxascaris leonina (14,3 ยฑ 7,9 OPG) et Taenia spp. (5,4 ยฑ 4,7 OPG) [60]. Lโaugmentation du nombre dโOPG dans la prรฉsente รฉtude pourrait rรฉsulter de la diffรฉrence entre lโenvironnement ainsi que la mรฉthode dโobservation. Dโautant plus que la quantitรฉ dโรฉlรฉments parasitaires retrouvรฉe dans les matiรจres fรฉcales nโest pas forcรฉment corrรฉlรฉ au nombre de parasites prรฉsent chez lโanimal, lโexcrรฉtion รฉtant variable dans le temps. Il nโy a pas dโexcrรฉtion dโลufs pendant la pรฉriode prรฉpatente (parasites immatures).
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Table des matiรจres
INTRODUCTION
RAPPELS
1. Helminthoses du tube digestif chez les chiens
2. Prรฉsentation des principaux helminthes des chiens
2.1. Nรฉmatodes
2.1.1. Ascarides
2.1.1.1. Famille des Ascarididรฉs
2.1.1.1.1. Toxascaris leonina
2.1.1.2. Famille des Toxocaridรฉs
2.1.1.2.1. Toxocara canis
2.1.1.3. Famille des Ancylostomatidรฉs
2.1.1.3.1. Ancylostoma spp
2.1.1.3.2. Uncinaria stenocephala
2.1.2. Autres familles
2.1.2.1. Famille des Capillaridรฉs
2.1.2.1.1. Capillaria aerophila
2.1.2.2. Famille des Trichuridรฉs
2.1.2.2.1. Trichuris vulpis
2.2. Cestodes
2.2.1. Famille des Dilรฉpididรฉs
2.2.1.1. Dipylidium caninum
2.2.2. Famille des Taeniidรฉs
2.2.2.1. Taenia spp
2.2.2.2. Echinococcus granulosus
3. Clinique et pathogรฉnie
3.1. Symptรดmes
3.2. Diagnostic
3.2.1. Diagnostic clinique
3.2.2. Diagnostic de laboratoire
3.3. Pathogรฉnie
3.3.1. Actions pathogรจnes des formes immatures
3.3.2. Actions pathogรจnes des formes adultes
METHODOLOGIE
1. Cadre de lโรฉtude
2. Type dโรฉtude
3. Pรฉriode รฉtudiรฉe et durรฉe de lโรฉtude
4. Population dโรฉtude
4.1. Critรจres dโinclusion
4.2. Critรจres dโexclusion
5. Mode dโรฉchantillonnage
6. Taille de lโรฉchantillon
7. Variables รฉtudiรฉes
8. Matรฉriels utilisรฉes
8.1. Matรฉriel animal
8.2. Bio-matรฉriel
8.3. Matรฉriel de prรฉlรจvement et de conservation des fรจces
8.4. Matรฉriel de traitement et dโobservation des รฉchantillons au laboratoire
9. Collecte de donnรฉes
9.1. Outils de collecte de donnรฉes
9.2. Mรฉthode de collecte et de conservation des fรจces
9.3. Traitement des รฉchantillons avant lโexamen
9.4. Mesures de biosรฉcuritรฉ
10. Analyse coproscopique et diagnose des รฉlรฉments parasitaires
10.1. Examen macro-coproscopique
10.2. Examen micros-coproscopique
10.2.1. La coprologie qualitative
10.2.2. La coprologie quantitative : mรฉthode de flottaison sur lame Mac Master
11. Analyse et traitement des donnรฉes
12. Limites de lโรฉtude
13. Considรฉrations รฉthiques
RESULTATS
1. Population canine enquรชtรฉe
2. Coproscopie
2.1. Aspect qualitatif
2.2. Aspect quantitatif
2.2.1. Prรฉvalence globale des helminthes dans la population prรฉlevรฉe
2.2.2. Les associations parasitaires
2.2.3. Prรฉvalence par espรจce parasitaire
2.2.4. Prรฉvalence par classe parasitaire
2.2.5. Degrรฉ dโinfestation
2.3. Association entre la prรฉvalence et les facteurs de risque
2.3.1. Prรฉvalence dโinfestation des chiens selon le groupe de race
2.3.2. Prรฉvalence dโinfestation des chiens selon le sexe
2.3.3. Prรฉvalence dโinfestation des chiens selon lโรขge
2.3.4. Prรฉvalence dโinfestation des chiens selon le mode de vie
2.3.5. Prรฉvalence dโinfestation des chiens selon la prรฉsence ou non dโautres animaux cohabitant avec le chien prรฉlevรฉ
DISCUSSION
1. Commentaires et limites du protocole
2. Prรฉvalence des infestations et facteurs de risque associรฉs
3. Associations parasitaires
4. Symptรดmes cliniques rencontrรฉs au sein du cabinet
5. Degrรฉ dโinfestation
6. Recommandations de lutte contre les helminthoses
6.1. A lโattention des propriรฉtaires des chiens
6.1.1. Mesures mรฉdicales
6.1.1.1. Choix des anthelminthiques
6.1.1.2. Les associations de molรฉcules
6.1.1.3. Protocoles de vermifugation
6.1.2. Mesures sanitaires
6.1.2.1. Pour le risque de zoonose liรฉ au chien
6.1.2.2. Contrรดle des parasites dans l’environnement
6.1.2.3. Lutte contre les hรดtes intermรฉdiaires
6.2. A lโattention des vรฉtรฉrinaires praticiens
6.3. A lโattention des chercheurs
6.4. A lโattention des services publics
CONCLUSION
REFERENCES BIBLIOGRAPHIQUES
ANNEXES
RESUME
ABSTRACT
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