Généralités sur l'oignon, Allium cepa L.

Généralités sur l’oignon, Allium cepa L.

Origine et distribution

Originaire d’Asie, l’oignon a été cultivé depuis le début de l’ère historique dans le bassin méditerranéen. Il a été disséminé par l’homme depuis son origine et est arrivé au Burkina Faso à partir d’Egypte où il est cultivé il y’a plus de 5 000 ans ((B.D.P.A., 1993). L’oignon s’est bien adapté dans la zone soudano-sahélienne pour les variétés qui font des bulbes en conditions de jours courts (B.D.P.A., 1993).

Taxonomie

Appartenant à la classe des monocotylédones, l’oignon appartient au super ordre des Liliiflorae, à l’ordre des Asparagales, à la famille des Alliaceae, à la tribu des Alliae, au genre Allium et à l’espèce cepa. Trois sous genres dont Rhizirideum, Allium et Melanocrommum émanent du genre Allium ((B.D.P.A., 1993). L’espèce Allium cepa est une espèce diploïde (2n=16) qui appartient au sous genre Allium (Hanelt, 1990).

Caractéristiques botaniques

Morphologie

La plante de l’oignon est constituée d’une tige très courte souterraine du centre de laquelle sont émises les feuilles de façon alternée de l’extérieur vers l’intérieur. Les feuilles formant 2 rangées opposées ont des limbes qui présentent une cavité interne. Elle produit 12 à 20 feuilles cylindriques ou quasi cylindriques en fonction de la date de semis et du type variétal. L’enracinement de la plante est superficiel, environ 20 cm (Messiaen et al., 1993 ; BD.P.A., 1993).

Cycle de développement

L’oignon est une plante bisannuelle qui forme à sa première année de production un bulbe bien différencié. Le bulbe repart en végétation, après une période de dormance, lorsque les conditions sont favorables à son développement. Le bulbe émet une ou plusieurs hampes florales pour la formation des ombelles (Messiaen et al., 1993). Chaque fleur à nervure centrale verte comprend un périanthe de six (06) sépales blanches, six (06) anthères vertes ou jaunes, un (01) ovaire à trois (03) loges contenant chacun deux (02) ovules, un (01) stylet terminé par un (01) stigmate. Un liquide gluant est exsudé par la surface stigmatique pour le dépôt des grains de pollen (de Bon, 1987 cité par Tarpaga, 2012).

Mode de production des semences d’oignon

L’émission de hampes florales peut se produire soit à partir de bulbes replantés en deuxième année de production (une fois la dormance levée) soit chez des plantes en voie de croissance végétative. Il existe alors deux (02) types de cycles de production des semences (Messiaen et al., 1993).

-Cycle de production bisannuel (Bulb to seed) (bulbe à graine)
Selon Brewster (1994), le cycle de développement de l’oignon se fait en trois phases dont deux à la première année de production et une à la deuxième année. La première phase part de la germination de la semence à la maturation du bulbe. La seconde correspond à la période de dormance après la formation du bulbe. Et la troisième phase répond à l’étape de la reproduction sexuée.

Il ressort qu’un bon rendement en production de semences graines est observé lorsque la mise en terre de la semence est faite pendant la saison sèche (Tarpaga, 2012).

-Cycle de production annuel (Seed to seed) ou « graine à graine»
Elle repose sur la faculté qu’ont certaines variétés d’oignon (cas du violet de galmi), à monter en graines en premier cycle de culture (Tarpaga, 2012). Un semis précoce est par rapport à une production normale de bulbes afin que les plantes subissent une vernalisation suffisante. Les plantes qui présentent des ombelles biens développées sont sélectionnées et laissées en végétation jusqu’à maturité (Messiaen et al., 1993). La production de graine à graine est pratiquée par plusieurs agriculteurs d’Afrique car cette pratique est facile et peu coûteuse. Pour l’oignon commun, la récolte de graines pour 1 ha planté avec 5 t de bulbes mère peut atteindre 500 kg (Messiaen et Rouamba, 2004).

Les semences d’oignon doivent être récoltées par temps sec, traitées avec douceur lors du nettoyage et emmagasinées dès que possible en atmosphère sèche. Elles se détériorent rapidement dans des conditions tropicales humides, en quelques mois. Cependant, si on les stocke, avec une teneur en eau de 7-8% dans des emballages hermétiquement clos ou des récipients avec un produit desséchant, elles peuvent être conservées plusieurs années (Messiaen et Rouamba, 2004).

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Table des matières

Introduction générale
Chapitre 1 : Généralités sur l’oignon, Allium cepa L.
1.1. Origine et distribution
1.2. Taxonomie
1.3. Caractéristiques botaniques
1.3.1. Morphologie
1.3.2. Cycle de développement
1.3.3. Mode de production des semences d’oignon
1.4. Diversité variétale de l’oignon au Burkina Faso
1.5. Zones de production et sols
1.6. Types de culture
1.7. Fertilisation et irrigation
1.8. Importance économique de la filière oignon au Burkina Faso
Chapitre 2 : Maladies, ravageurs et méthodes de lutte
2.1. Maladies de l’oignon
2.1.1. Maladies fongi.ques
2.1.1.1. Moisissure noire
2.1.1.2. Pourriture du col
2.1.1.3. Pourriture basale
2.1.1.4. Altemariose ou la tache pourpre de l’oignon
2.1.1.5. Pourriture blanche
2.1.1.6. Mildiou
2.1.2. Maladies bactériennes
2.1.2.1. Pourritures molles induites par Erwinia spp
2.1.2.2. Pourritures molles causées par Pseudomonas spp
2.1.3. Maladie virale
2.2 Ravageurs
2.2.1. Mouche de l’oignon Delia antiqua Meigen
2.2.2. Chenilles
2.2.3. Trips tabaci Lindeman
2.2.4. Nématodes à lésions, Pratylenchus penetrans (Cobb) Filip.et Stek.
2.2.5. Nématodes à galles, Meloidogyne spp
Chapitre 3 : Contrôle de la qualité sanitaire des semences
3.1. Principes et définition
3.2. Quelques méthodes courantes de contrôle de la qualité sanitaire des semences
3.2.1. Tri des semences sèches infectées
3.2.2. Test de lavage
3.2.3. Méthode du papier buvard
3.2.4. Culture sur milieu gélosé
3.2.5. Test basé sur les symptômes développés sur les jeunes plantes
3.3. Amélioration de la qualité sanitaire des semences
3.3.1. Mesures de quarantaine
3.3.2. Méthode chimique
3.3.3. Utilisation de substances naturelles végétales
Chapitre 4 : Évaluation de la mycoflore des semences d’oignon
4.1. Matériel et méthodes
4.1.1. Matériel d’étude
4.1.2. Méthodes
4.1.2.1. Collecte des échantillons
4.1.2.2. Échantillonnage et incubation
4.1.2.2.1. Échantillonnage
4.1.2.2.2. Ensemencement et incubation
4.2. Collecte des données
4.3. Analyse des données et présentation des résultats
4.4. Résultats et Discussion
4.4.1. Résultats
4.4.1.1. Taux d’infection par les champignons pathogènes
4.4.1.2. Taux de contamination par les champignons saprophytes
4.4.2. Discussion
4.5. Conclusion partielle
Chapitre 5 : Analyse de la mycoflore sur plantules d’oignon obtenues à partir de semences naturellement infectées
Conclusion générale