DEUX METHODES DE DIAGNOSTIC DE GESTATION CHEZ LA BREBIS LADOUM

Elevage des ovins au Sénégal

     L’élevage des ovins assure plusieurs fonctions socioéconomiques dans la vie des populations locales au cours des manifestations sociales (baptême, mariage et fête de Tabaski). Il constitue une source de revenu qui permet aux ménages de faire face aux dépenses quotidiennes. Le mode d’élevage est intensif et semiintensif en milieu urbain dont les principales caractéristiques sont la construction de bergeries, l’achat de l’aliment de bétail et de produits vétérinaires et l’amélioration génétique avec l’introduction de races plus performantes que le Peul-peul sénégalais (FALL et al., 2004).

Elevage du mouton Ladoum au Sénégal

       Vers 1960, les éleveurs de la ville de Thiès ont été parmi les premiers à ramener la race Ladoum de son berceau mauritanien, dans le but d’améliorer génétiquement leurs troupeaux. Les éleveurs organisent une circulation des géniteurs entre leurs troupeaux et les meilleurs résultats ont été observés par rapport à la vitesse de croissance et au poids des animaux. Les agneaux obtenus par ces éleveurs sont vendus un peu plus cher que ceux des autres races locales. Les éleveurs vendent le plus souvent des agneaux et des antenais dont les prix varient entre 250000 et 600000 FCFA. Les béliers qui ne sont pas issus de mâles et femelles dits champions se commercialisent entre 300000 et 1 200000 FCFA. Les animaux qui sont issus des « ovins champions » se vendent au moins à 1 000000 FCFA. Les dépenses alimentaires sont pour les bergeries qui ont entre 3 et 10 ovins, 10 et 20 ovins et plus de 20 sujets respectivement de 93,42 %, 92,36 % et 77,68 % des charges. Les marges brutes annuelles des bergeries varient de 370000 à 1 444400 FCFA Tableau I (FALL et al., 2017)

Œstrus

       L’œstrus ou chaleurs, est la phase de maturation et de déhiscence du follicule, donc de ponte ovulaire. La connaissance de cette phase est primordiale car elle correspond à une période optimale pour une saillie naturelle ou contrôlée. Chez la brebis, les chaleurs durent de 24 à 72 heures avec une moyenne de 35 heures et se manifestent en plus grand nombre de minuit à midi que de midi à minuit. Les signes physiques de l’œstrus, sont relativement peu perceptibles par suite de la faible vascularisation et de la tuméfaction réduite des organes génitaux externes. La vulve est légèrement tuméfiée et laisse s’écouler une petite quantité de liquide glaireux. La femelle peut ne pas montrer de comportement spécial en dehors de la présence du bélier, c’est pourquoi lorsqu’on veut être sûr de la réalité de l’œstrus, il faut placer la brebis en présence du mâle et si elle est en chaleurs, elle accepte la saillie (MICHAUD, 2006)

Intervalle agnelage-agnelage

       L’intervalle agnelage-agnelage est le nombre de jours séparant deux agnelages consécutifs. C’est un facteur important pour la rentabilité d’un élevage, car il faut avoir comme objectif deux (02) agneaux par an et par brebis. Pour qu’une brebis réalise 2 agnelages par an, il est nécessaire qu’elle soit saillie durant le mois qui suit l’agnelage. Dans ce système, l’intervalle entre agnelage est de 6 mois. Si une lutte est ratée, cet intervalle devient égal à 12 mois.

Endocrinologie de la gestation

       Chez la brebis, au début de la gestation, la sécrétion de progestérone est d’origine ovarienne et provient des cellules du corps jaune. Cette sécrétion est continue et indispensable pendant presque deux mois. Sa concentration dans le sang périphérique est analogue à celle enregistrée au cours d’une phase lutéale cyclique de l’ordre de 5 ng/ml. Après le 2èmemois de gestation, contrairement à celle d’autres espèces (bovine par exemple), l’unité fœto-placentaire ovine est capable de synthétiser de la progestérone. Celle-ci est suffisante dès le 55èmejour pour maintenir le fœtus inutero même, s’il y a ovariectomie. La figure 10 rapporte l’évolution de la concentration plasmatique de progestérone. Elle suit assez bien l’évolution de la croissance placentaire jusqu’au début du dernier mois de gestation. Lors de cette dernière période, la production de progestérone d’origine placentaire semble augmenter jusqu’aux dernières heures précédant la mise-bas. Il peut atteindre, 5 à 6 jours avant le part, 6 à 8 ng/ml pour une gestation simple ou 15 ng/ml pour une gestation double. Les œstrogènes dont le niveau plasmatique n’augmente qu’en fin de gestation sont produits, au cours de la gestation, essentiellement sous forme sulfoconjugués. Tout se passerait comme si les œstrogènes synthétisés étaient mis en réserve sous forme de sulfates sans perturber l’état utérin gravidique.

Table des matières

INTRODUCTION
PREMIERE PARTIE : SYNTHESE BIBLIOGRAPHIQUE
CHAPITRE I : L’ELEVAGE OVIN AU SENEGAL
I.1. Contribution à la croissance économique
I.2. Rôle socioéconomique
I.3. Elevage des ovins au Sénégal
I.4. Races ovines exploitées au Sénégal
I.5. Caractéristiques zootechniques de certaines races ovines
I.5.1. Mouton maure blanc à poil ras ou Touabire
I.5.2. Mouton Bali Bali
I.5.3. Mouton Ladoum
I.6. Elevage du mouton Ladoum au Sénégal
I.7. Contraintes
CHAPITRE II : LA REPRODUCTION CHEZ LA BREBIS
II.1.1. Notions de cycle sexuel et critères d’aptitude à la reproduction
II.1.1.1. Cycle sexuel
II.1.1.1.1. Composante cellulaire
II.1.1.1.1.1.Proœstrus
II.1.1.1.1.2. Œstrus
II.1.1.1.1.3. Métœstrus
II.1.1.1.1.4. Diœstrus
II.1.1.1.2. Composante comportementale
II.1.1.1.3. Composante hormonale
II.1.1.2. Contrôle du cycle sexuel
II.1.1.3. Critères d’aptitude à la reproduction
II.1.1.3.1. Age et poids à la puberté
II.1.1.3.2. Age au premier vêlage
II.1.1.3.3. Intervalle agnelage-agnelage
II.1.1.3.4. Involution utérine
II.1.2. Moyens de maitrise du cycle
II.1.2.1. Détection des chaleurs
II.1.2.1.1. Observation directe
II.1.2.1.2. Observation indirecte
II.1.2.1.3. Détection par des méthodes annexes
II.1.2.2. Induction et synchronisation des chaleurs
II.1.2.2.1 Méthodes zootechniques
II.1.2.2.2. Méthodes médicales
II.1.3. Technique de reproduction
II.1.3.1. Saillie naturelle
II.1.3.2. Insémination artificielle
II.1.3.3. Transfert embryonnaire
II.2. Physiologie de la gestation
II.2.1. Phases de la gestation
II.2.1.1. Progestation
II.2.1.1.1. Traversée tubaire
II.2.1.1.2. Séjour utérin préimplantatoire
II.2.1.1.3. Nidation
II.2.1.2. Gestation proprement dite
II.2.1.2.1. Placenta
II.2.1.2.1.1. Types de placenta
II.2.1.2.1.2. Rôle du placenta
II.2.1.2.2. Adaptation de l’organisme maternel à la gestation
II.2.1.2.2.1 Modifications morphologiques
II.2.1.2.2.1.1. Utérus
II.2.1.2.2.1.2. Col utérin
II.2.1.2.2.1.3. Ovaires
II.2.1.2.2.1.4. Glandes mammaires
II.2.1.2.2.2. Modifications fonctionnelles
II.2.1.2.2.3. Modifications métaboliques
II.2.2. Gestation
II.2.2.1. Biologie de la gestation
II.2.2.1.1. Vie libre de l’œuf fécondé
II.2.2.1.2. Vie embryonnaire
II.2.2.1.3. Vie fœtale
II.2.3. Endocrinologie de la gestation
II.2.4. Biochimie de la gestation
II.2.4.1. Définition et structure de la progestérone
II.2.4.2. Biosynthèse
II.2.4.3. Distribution
II.2.4.4. Evolution de la progestérone au cours d’un cycle sexuel
II.2.4.5. Catabolisme
CHAPITRE III : DIAGNOSTIC DE GESTATION
III.1. Diagnostic clinique
III.1.1. Signes cliniques probables
III.1.1.1. Non-retour des chaleurs
III.1.1.2. Modifications de caractère
III.1.1.3. Développement abdominal
III.1.1.4. Développement mammaire
III.1.1.5. Etat croqué
III.1.2. Signes cliniques de confirmation
III.1.2.1. Palpation abdomino-rectale
III.1.2.1.1. Avantages et inconvénients de la palpation abdominorectale
III.2. Diagnostic de gestation par Echographie
III.3. Diagnostic de laboratoire
III.3.1. EarlyPregnancy Factor
III.3.2. Œstrogènes
III.3.3. Somatomammotropine chorionique
III.3.4. Dosage des protéines associées à la gestation
III.3.5. Dosage de la progestérone
DEUXIEME PARTIE : ETUDE EXPERIMENTALE
CHAPITRE I : MATERIEL ET METHODES
I.1. Zone et période d’étude
I.1.1. Zone d’étude
I.1.1.1. Climat
I.1.1.2. Végétation
I.1.1.3. Activité socioéconomique
I.1.2. Période et sites d’étude
I.2. Matériel
I.2.1. Matériel animal
I.2.2. Matériel de prélèvement de sang
I.2.3. Matériel de conservation du sang
I.2.4. Matériel de laboratoire
I.2.4.1. Matériel de laboratoire
I.2.4.2. Kit progestérone
I.2.5. Matériel d’échographie
I.3. METHODES
I.3.1. Echantillonnage, répartition et critères de sélection
I.3.2. Mode d’élevage
I.3.3. Démarche méthodologique
I.3.4. Dosage de la progestérone
I.3.4.1. Collecte des échantillons du sang
I.3.4.1.1. Prélèvement et identification des échantillons de sang
I.3.4.1.2. Transport et stockage des échantillons de sang
I.3.5. Diagnostic de gestation par dosage ELISA de la progestérone dans le plasma
I.3.5.1. Description et principe du test ELISA
I.3.5.2. Préparation des réactifs
I.3.5.3. Protocole de réalisation du test
I.3.5.4. Calculs et résultats
I.3.6. Réalisation de l’échographie
I.3.7. Traitement et analyse statistique des données
CHAPITRE II : RESULTATS
II.1. Résultats du DG par dosage de la progestérone
II.2. Résultat du DG par échographie
II.3. Critères de qualité des deux méthodes de diagnostic
II.4. Résultats des agnelages et des avortements
II.4.1 agnelages
II.4.2. Avortement
II.4.3. Taux réel de gestation
II.5. Conformité entre le dosage de la progestérone et l’échographie
CHAPITRE III : DISCUSSION
III.1. Matériel animal
III.2. Lieu d’étude
III.3. Taux de gestation
III.3.1. Diagnostic de gestation par dosage de la Progestérone
III.3.2. Diagnostic de gestation par échographie
III.4. Critères de qualité des deux méthodes
III.4.1. La sensibilité et la spécificité
III.4.2. VPP et VPN
III.5. Taux d’agnelage
III.6. Conformité entre les deux méthodes
III.7. Limites de l’étude
RECOMMANDATIONS
CONCLUSION
REFERENCES BIBLIOGRAPHIQUES
ANNEXES

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