Composition d’ail en acides gras

Composition d’ail en acides gras

MATERIELS ET METHODES

Conditions optimales de croissance des champignons parasites:
– milieu de culture optimal:
Trois milieux de culture ont été utilisés pour déterminer le milieu optimal de croissance des champignons parasites (S. cepivorum et Stylopage) :
– Un milieu gélosé à 1,5% (p/v) à l’extrait de malt à 1,5% (p/v).
– Un milieu gélosé à 2% (p/v) à l’extrait d’ail à 8% (v/v).
– Un milieu synthétique gélosé à 2% (p/v) enrichis en extrait d’ail à 5% (v/v).
Les boites de pétri ont été ensemencées au centre avec un inoculum de 5mm prélevé de la partie apicale du champignon, puis elles ont été incubées à l’étuve à 25°C dans une atmosphère saturée en vapeur d’eau et à l’obscurité.
Cette expérience a été répétée 3 fois avec 3 essais pour chaque échantillon.
N.B : voir composition des milieux de culture dans l’annexe I.

pH et température optimal

Le milieu de culture optimal de croissance des champignons parasites a été préparé à différents pH (4, 5, 6 et 7) ajusté avec une solution de NaOHN/5 et HClN.
Les boites de pétri ont été ensemencées au centre avec un inoculum de 5mm prélevé de la partie apicale du champignon. Les boites sont ensuite incubées à différentes température (15°, 20°, 25°, 30° et 35°C) dans une atmosphère saturée en eau et à l’obscurité.
La croissance du diamètre de S. cepivorum et Stylopage a été quotidiennement suivie pendant 10 jours.
N.B : Cette expérience a été répétée 3 fois avec 3 essais pour chaque échantillon.
Criblage sélectif:
Le criblage sélectif nécessite la disponibilité d’un grand nombre de microorganismes que nous avons isolé à partir du sol du jardin de la faculté des Sciences Dhar El Mehraz, du lait entier de détaillant et la microflore d’ail en stockage selon les pratiques standards de microbiologie.

Criblage sélectif de champignons antagonistes

Sur milieu et sous conditions optimales de croissance des champignons parasites (Sclerotium cepivorum et Stylopage), le criblage sélectif de champignons antagonistes a été effectué de la façon suivante :
L’inoculum du parasite (5mm de diamètre) a été déposé au centre de la boite de pétri.
A une distance de 3cm de l’inoculum et 1,3cm de la marge de la boite, l’inoculum des champignons isolés du sol a été déposé (fig.13).
Afin de déterminer le comportement des champignons parasites, le témoin a été réalisé en déposant deux inocula du champignon parasites séparé de 3cm et 2,5 cm de la marge de la boite (fig. 14). Ensuite, les boites ont été incubées dans les conditions optimales de croissance des champignons parasites. L’effet anti-fongique des champignons antagonistes s’est révélé par une inhibition partielle ou totale de la croissance radiale des champignons parasites.

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Table des matières

REMERCIEMENTS
RESUME
TABLE DES MATIERES
LISTE DES TABLEAUX
LISTE DES FIGURES
INTRODUCTION GENERALE
REVUE BIBLIOGRAPHIQUE
I- Systématique d’ail
II- Données techniques sur la culture de l’ail au Maroc
II-1- Plante et importance de la culture au Maroc
II-2- Préférences pédo-climatiques
II-3- Variétés, travail de sol et semis
II-4- Irrigation
II-5- Récolte et manipulation du produit
III- Production, rendement et surface cultivée en ail
IV- Propriétés chimiques et physiques de l’ail
IV-1- Propriétés chimiques et la teneur en minéraux
IV-2- Propriétés physiques
V- Composition d’ail en acides gras
VI- Les bienfaits de l’ail
VI-1- Principes actifs et propriétés
VI-2- Principes actifs bénéfiques
VII- Les principaux ennemis des Alliums
VIII- Sclerotium Cepivorum (La pourriture blanche)
VIII-1- Origine de l’inoculum
VIII-2- Ecologie et cycle de vie
VIII-3- Les symptômes
VIII-4- La levée de la microbiostase
PREMIERE PARTIE : Analyse microbiologique de l’ail (Allium sativum) en stockage
I- INTRODUCTION
I-1- Généralités
I-2- Objectif du travail
II- MATERIELS ET METHODES
II-1- Numération de la microflore d’ail en stockage
II-1-1- Préparation des solutions de base
II-1-2- Préparation des milieux de cultures
II-1-3- Préparation des suspensions-dilutions d’ail
II-1-4- Ensemencement et incubation
II-1-5- Lecture des résultats
II-1-6- Purification des souches isolées
II-1-7- Identification préliminaire des souches isolées
II-1-8- Stockage et conservation des souches
III- RESULTATS ET DISCUSSIONS
III-1- Numération de la microflore d’ail en stockage
III-2- Identification des souches isolées
IV- CONCLUSION
DEUXIEME PARTIE : Recherche des antagonistes des champignons « Sclerotium et Stylopage » de la pourriture blanche de l’ail
I- INTRODUCTION
I-1- Généralités
I-2- Objectif du travail
II- MATERIELS ET METHODES
II-1- Conditions optimales de croissance des champignons parasites
II-1-1- Milieu de culture optimal
II-1-2- pH et température optimal
II-2- Criblage sélectif
II-2-1- Criblage sélectif de champignons parasites
II-2-2- Criblage sélectif de bactéries, levures et actinomycètes antagonistes
II-3- Purification des souches et évaluation du pouvoir antagoniste
II-3-1- Purification des souches
II-3-2- Etude du pouvoir antagoniste de chaque souche séparément
III- RESULTATS ET DISCUSSIONS
III-1- Conditions optimales de croissance des champignons parasites
III-1-1- Milieu de culture optimal
III-1-2- pH et température optimal
III-2- Criblage sélectif de microorganismes antagonistes
III-3- purification des souches et évaluation du pouvoir antagonist
IV- CONCLUSION
TROIXIEME CHAPITRE : Recherche d’une méthode de conservation biologique et/ou intégré de l’ail
I- INTRODUCTION
I-1- Généralités
I-2- Objectif du travail
II- MATERIELS ET METHODES
II-1- Préparation des traitements
II-2- Conservation des gousses d’ail
II-2-1- Conservation des gousses d’ail par le mélange cendre+sel+eau
II-2-2- Conservation des gousses d’ail par les margines
II-2-3- Conservation de l’ail par la culture liquide de la colonie –I-
II-3- Etude du pouvoir décomposeur des champignons parasites de l’ail traité
III- RESULTATS ET DISCUSSIONS
III-1- Conservation des gousses d’ail
III-2- Etude du pouvoir décomposeur des champignons parasites de l’ail traité
IV- CONCLUSION
CONCLUSION GENERALE ET PERSPECTIVES
REFERENCES BIBLIOGRAPHIQUE
ANNEXE I
ANNEXE II