Attraction des moustiques pour les oiseaux domestiques

Introduction

  La fièvre West Nile est une zoonose d’origine virale qui affecte les animaux domestiques et sauvages (principalement les oiseaux), l’homme pouvant être touché mais de façon accidentelle (Campbell et al. 2002).L’homme et les chevaux sont les vertébrés les plus fréquemment touchés par la maladie (Petersen et Roherig 2001). L’infection peut être asymptomatique dans la plupart des cas ou tout au moins se présente sous forme de syndromes grippaux bénins, mais rarement elle provoque des maux de tête sévères et peut aller jusqu’à des troubles neurologiques graves et parfois mortels (Mathiot et al. 1983 ; Otlund et al. 2001). Chez les oiseaux, réservoirs naturels du virus West Nile, certaines espèces infectées par le virus développent à la fois une virémie suffisante (plus de 106.3 PFU/ml) (Sardelis et al. 2001) pour infecter les moustiques vecteurs et une immunité permanente vis-à-vis du virus tandis que d’autres espèces d’oiseaux deviennent malades et meurent (Campbell et al. 2002).L’agent pathogène de la Fièvre West Nile est un virus de la famille des Flaviviridae du genre Flavivirus. Cette famille comprend deux autres genres, Pestivirus et Hepacivirus et est caractérisée par sa particule virale constituée par une enveloppe icosaédrique (Zhang et al.2003). Le nom « flavivirus » est tiré du latin flavus qui signifie jaunisse en relation avec la fièvre jaune (Mukhopadhyay et al. 2005). Le genre Flavivirus peut être divisé en complexe antigénique selon des critères sérologiques ou sur une base phylogénétique ou tout simplement selon le type de vecteur impliqué principalement dans sa transmission (Mukhopadhyay et al. 2005). Le virus West Nile appartient à l’un de ces complexes antigéniques qui est le complexe antigénique de l’encéphalite japonaise qui comprend le virus de l’encéphalite japonaise, le virus West Nile, le virus Kunjin et le virus de l’encéphalite de la Murray valley (Mukhopadhyay et al. 2005). Cinq lignées du virus West Nile ont été identifiées dont 2 lignées majeures (lignée I et lignée II) connues pour être pathogènes pour l’homme et les animaux (Pesko et Ebel, 2012). La lignée I est largement distribuée dans le monde tandis que la lignée II est restreinte à la région sub-saharienne et à Madagascar (Lanciotti et al. 1999). Le génome viral (figure 1) est constitué d’ARN monocaténaire de polarité positive, d’une longueur moyenne de 11000 nucléotides avec des séquences non codantes d’environ 100 et 600 nucléotides positionnées respectivement aux extrémités 5’ et 3’ du génome (Campbell et al. 2OO2). La particule virale (figure 1) est entourée par une enveloppe de 50 nm de diamètre, de nature lypoglycopeptidique appliquée sur la nucléocapside de symétrie icosaédrique, à la surface de laquelle apparaissent les dimères de la protéine de l’enveloppe (Martin Acebes et Saiz 2012)

Biodiversité

  24 espèces réparties en 7 genres ont été observées. Dix espèces de moustiques parmi les 24 Analalava. 15 espèces (appartenant à 4 genres) sont présentes dans le village de Morafeno. Dans le village d’Ankelimitondrotra, 14 espèces (5 genres). Dans le village d’Analalava  19 espèces (5 genres). Mis à part les 10 espèces que partagent ces trois villages, An. grassei et Ad. pauliani représentées chacune par un seul spécimen, ont été trouvées uniquement dans le village de Morafeno, augmentant sa diversité spécifique. Cx annulioris et Cx. argenteopunctatus sont présentes seulement dans le village d’Ankelimitondrotra. An. funestus est présente à Morafeno et Ankelimitondrotra. Ae. albodorsalis, Ae. tiptoni, An. maculipalpis, An. pretoriensis, Cx. decens et Cx. simpsoni/comorensis sont présentes uniquement dans le village d’Analalava. An. mascarensis est commune aux deux villages Morafeno et Analalava alors que Cx. univittatus/neavei est commune aux villages d’Analalava et d’Ankelimitondrotra. Notons en outre que le genre Uranotaenia, Aedeomyia, Culex, Aedes et Anopheles ont respectivement des individus (70 au total) qui n’ont pas encore été identifiés jusqu’au niveau spécifique due principalement au mauvais état des spécimens particulièrement ceux qui ont été collecté avec les pièges lumineux.La figure 7 représente la courbe cumulative du nombre d’espèces observés autour du lac Kinkony entre Février et Décembre 2014. D’après cette figure, le nombre total d’espèces observées augmente depuis le mois de Février jusqu’au mois d’Août et présente un plateau vers la fin de notre étude. Ce plateau montre que l’on a détecté la majorité des espèces de culicidae présentes dans la zone d’étude. Après la 4ème mission, 24 espèces ont été décrites autour du lac, nombre qui s’est stabilisé malgré 2 missions supplémentaires.

Dynamique des populations de moustiques

Tableau 6: Analyse statistique de l’effet combiné des facteurs village et mois de capture sur le nombre de moustique présentes autour du lac Kinkony. (Test ANOVA à deux facteurs)

L’étude de la dynamique des populations de moustiques a été réalisée en analysant les résultats obtenus avec les pièges lumineux type CDC.Le village et le mois de capture de capture ont un effet significatif sur le nombre de moustiques capturés (tableau 6). La figure 11 montre la variation de la densité moyenne des moustiques autour du lac Kinkony de Février à Décembre 2014. A Morafeno, la densité des moustiques augmente du mois de Février au mois de Juin, présente un pic de densité au mois d’Août puis diminue drastiquement au mois d’Octobre puis la densité commence à augmenter au mois de Décembre après la première tombée des pluies. A Morafeno, La densité des moustiques est différente entre le mois de Février et les mois d’Avril, Juin et Août. Pour Ankelimitondrotra, la densité des moustiques augmente du mois de Février au mois d’Avril ;après un pic de densité au mois d’Avril, la densité des moustiques diminue progressivement jusqu’au mois d’Octobre et Décembre. A Ankelimitondrotra, la densité des moustiques est différente entre le mois d’Avril et les mois de Février, Juin, Août et Octobre. Pour Analalava, la densité des moustiques est faible et ne varie que très peu du mois de Février au mois de Décembre.

Attraction des moustiques pour les oiseaux domestiques

  Les résultats des collectes des moustique avec les pièges BG sentinel permettent de faire une estimation de l’attractivité des oiseaux domestiques sur les vecteurs potentiels du virus West Nile (Figure 13). Ma. uniformis représente 6,5% du nombre total des moustiques capturés avec les BG sentinel. Trois espèces appartenant au genre Culex, Cx. decens, Cx. poicilipes et Cx. univittatus/neavei représentent respectivement 0,81%, 1,89% et 1,35% du nombre total des moustiques capturés avec les BG sentinel. Ad.madagascarica, l’espèce la plus abondante dans l’ensemble des trois villages durant la période d’échantillonnage mais aussi dans l’ensemble des moustiques capturés avec les pièges BG sentinel puisqu’elle représente 76,96% du nombre total des moustiques collectés. An. pauliani a été capturée avec les pièges BG sentinel seulement à Analalava avec une proportion de 4,06%. Il faut noter qu’aucune des autres espèces qui ont été associées au virus West Nile, An. coustani, An. maculipalpis, Cx. antennatus et Cx. tritaeniorhyncus, n’ont été capturées avec ce type de piège. Outre les moustiques vecteurs potentiels du virus West Nile, 7 autres espèces de moustiques ont été collectées dans les BG sentinel. Ces espèces sont An. squamosus/cydipis, An. pharoensis, An. mascarensis, An. gambiae, An. funestus, Ae. tiptoni et Ae. albodorsalis.

Table des matières

I- Introduction
II- Matériels et Méthodes
1-Site d’étude : District de Mitsinjo (Région Boeny)
a- Situation géographique
b- Caractéristiques climatiques de la zone d’étude
2-Méthodologie 
a- Période d’étude
b- Matériels de piègeages
c- Protocole d’échantillonnage
3-Analyse des données
III- Résultats
1- Biodiversité
2- Abondance spécifique relative
3- Distribution spatiale
4- Dynamique des populations de moustiques
5- Attraction des moustiques pour les oiseaux domestiques
IV- Discussions
V- Conclusions et perspectives

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